바다니

Sea louse
"바다 이"라고 불리는 가려움증 피부염은 바다표범의 분화를 참조하십시오.
바다니
Male female sea lice.jpg
수컷과 암컷 Lepeophtheirus 연어
과학적 분류 e
왕국: 애니멀리아
문: 절지동물
하위문: 갑각류
클래스: 헥사나우플리아
서브클래스: 요각류
주문: 시포노스토마로이드과
패밀리: 갈매기과
버마이스터, 1834년
속
동의어

에우리포리스과

바다이끼(단칭: 바다이끼)는 갈매기과의 요각류(작은 갑각류)로 시포노스토마노이드목의 일종이다.그들은 숙주 물고기의 점액, 표피 조직, 그리고 피를 먹고 사는 해양 외기생충입니다.37개 속에 약 559종이 있으며, 약 162종과 268종의 칼리구스를 포함하고 있다.

Lepeophthyirus와 Caligus속은 해양 물고기, 특히 양식 연어에 기록된 어종을 기생시킨다.레페오피루스 연어와 다양한 칼리그스 종은 소금물에 적응하여 양식 및 야생 대서양 연어의 주요 외부 기생충이다.몇몇 구충제들이 통제 목적으로 개발되었다.연어는 생물학과 연어 숙주와의 상호작용 분야에서 가장 잘 알려져 있다.

Caligus Rogercreseyi는 칠레의 [3]연어 양식장에서 주요 우려의 기생충이 되었다.연구는 기생충과 숙주-기생충의 상호작용에 대해 더 잘 이해하기 위해 진행 중이다.최근 대서양에 사는 연어는 태평양에서 온 연어와 유전적 차이가 충분하다는 증거도 발견되어 대서양 연어와 태평양 연어가 각각 [4]대서양 연어와 태평양 연어류와 독립적으로 함께 진화했을 가능성이 있다.

다양성

갈매기과는 37개 속에 [1]약 559종을 포함하고 있는 것으로 추정된다.이들 중 가장 큰 것은 약 268종의 [5]칼리구스와 약 162종의 [6]레페오프테바이러스이다.

야생어

초기 형태학 연구 외에 바다 이의 생물학에 대한 대부분의 이해는 연어 양식장의 물고기들을 감염시키는 바다 이들과 관련된 문제들을 이해하기 위해 고안된 실험실 연구에 기초한다.바다 이의 생물학과 야생 물고기와의 상호작용에 대한 정보는 개방 그물망 발달의 오랜 역사를 가진 대부분의 지역에서 희박하다. 바다 이의 배경 수준과 이동 메커니즘에 대한 이해가 양식 운영자의 거주 허가 조건이었던 경우가 거의 없기 때문이다.

많은 바다니 종은 숙주 속과 관련하여 특이하다. 예를 들어, L. salmonis는 막대기를 포함한 무지외어류와 널리 양식되는 대서양 연어(Salmo salar)를 포함한 연어류에 대한 특이성이 높다.연어는 갈색 송어(Salmo Trutta), 북극 연어(Salvelinus alpinus), 태평양 연어의 모든 종을 포함한 다른 연어과에 기생할 수 있습니다.태평양 연어의 경우 코호, 첨, 핑크 연어(각각 Oncorhynchus kisnutch, O. keta, O. gorbuscha)가 L. 연어를 부착할 때 강한 조직 반응을 일으켜 감염 [7]첫 주 이내에 거부반응을 일으킨다.Pacific L. salmonis는 3개의 스파인 스틱백(Gasterosteus accleatus)[8]으로 라이프 사이클 전체를 개발할 수 있지만 완성할 수는 없습니다.이것은 대서양 연어에서는 관찰되지 않았다.

바다 이의 플랑크톤 단계가 어떻게 분산되고 새로운 숙주를 발견하는지는 아직 완전히 알려지지 않았다.온도, 빛, 해류가 주요 요인이고 생존은 25º [9][10][11][12]이상의 염도에 달려 있습니다. L. 연어 요각류는 빛을 향해 위로 이동하고 연어 스몰트는 새벽에 [13]숙주를 찾기 쉽게 하기 위해 아래쪽으로 이동합니다.L. 연어에 대한 여러 현장 및 모델링 연구는 요생동물 개체군을 조사했고 플랑크톤 단계가 어떻게 그들의 행동이 해안선과 강 하구[15] 쪽으로 이동되는지를 포함하여 그들의 [11][14]근원으로부터 수십 킬로미터까지 운반될 수 있다는 것을 보여주었다.

연어가 민물에서 돌아왔을 때 L. salmonis 감염의 원인은 항상 미스터리였습니다.바다 이는 민물로 돌아가면 연어류와 같은 무좀성 물고기에서 죽고 떨어진다.대서양 연어는 가을에 돌아와 번식을 하기 위해 상류로 이동하지만, 연어는 다음 봄까지 소금물로 돌아가지 않습니다.태평양 연어는 6월부터 해양 근해로 돌아와, 종과 운행 시기에 따라 늦어도 12월까지는 끝나지만, 스몰트는 보통 4월부터 8월 하순에 걸쳐 종과 운행 시기에 따라 이동한다.

바다 이는 강어귀에 남아 있는 물고기를 먹고 살거나 아직 알려지지 않은 숙주로 옮겨 겨울을 나기도 한다.스몰트는 봄에 강어귀에 들어갈 때 바다니 애벌레, 혹은 성충에 감염된다.야생에서 바다 이가 물고기 사이에 어떻게 분포하는지도 알려지지 않았다.Lepeophtheyirus spp.의 성인 단계는 실험실 조건에서 전염될 수 있지만, 빈도는 낮습니다.갈매기는 다른 종류의 물고기들 사이에서 매우 쉽게 옮겨지며 [11]플랑크톤에서 정기적으로 발견된다.

형태학

연어는 대부분의 Caligus spp.의 약 두 배 크기인 경향이 있다(예: C. lenatus, C. clemensi 등).몸은 4개의 부위로 구성되어 있다: 두흉부, 네 번째 (다리 지지) 부분, 생식기 콤플렉스, 그리고 복부.[16]두흉부는 세 번째 다리를 가진 부분까지 모든 신체 부분을 포함하는 넓은 보호막을 형성합니다.물고기의 이를 잡아주는 흡착판 역할을 합니다.모든 종은 사이펀 또는 구강 원뿔 모양의 입 부분을 가지고 있다.두 번째 더듬이와 구강 부속물은 기생충을 물고기에 고정시키는 것을 돕기 위해 수정된다.두 번째 더듬이는 수컷이 [17]짝짓기를 할 때 암컷을 잡기 위해 사용되기도 한다.다 자란 암컷은 항상 수컷보다 상당히 크고 많은 종에서 체중의 대부분을 차지하는 매우 큰 생식기 콤플렉스를 발달시킵니다.500~1000개의 알(L. salmonis)로 이루어진 두 개의 알줄은 성숙함에 따라 색이 짙어지며 암컷의 몸 길이와 거의 같다.한 마리의 암컷은 약 7개월 [11][13][18]동안 평생 6-11쌍의 달걀줄을 생산할 수 있습니다.

발전

바다 이에는 자유수영(플랭크토닉)과 기생생활 단계가 있으며, 모두 털갈이로 [16][17][19][20]구분된다.L. 연어의 발육률은 알에서 성체까지 온도에 따라 17~72일 정도 차이가 난다.L. salmonis의 라이프 사이클은 그림에 나타나 있습니다. 스테이지의 스케치는 [19]Schram의 것입니다.

알은 나우플라이어 I으로 부화해 두 번째 나우플라이어 단계로 넘어갑니다.나우플라이어 단계는 에너지를 위한 노른자 비축량에 따라 먹이를 주지 않고 수영에 적응합니다.요각류 단계는 감염 단계이며 화학 및 기계 감각적 단서를 통해 적절한 숙주를 찾는다.조류, 염도, 빛, 그리고 다른 요소들도 요각류들이 [11]숙주를 찾는데 도움을 준다.어류에 대한 선호 정착지는 유체역학적 교란이 가장 적은 지역,[10][21] 특히 지느러미와 기타 보호 구역에서 발생한다.요각류(copepodids)는 성모 I 단계로 탈모하기 전에 적당한 숙주 사료에 일정 기간 부착되어 있다.멍니는 각각 털갈이로 분리된 세 개의 추가 찰리머스 단계를 거치면서 성장을 계속합니다.네 가지 성모 스테이지의 특징 중 하나는 그것들이 전두 필라멘트로 불리는 구조에 의해 물리적으로 숙주에 부착되어 있다는 것이다.앞니 필라멘트의 시기, 생산 방법, 물리적 구조에서의 차이는 바다니 종마다 나타난다.털갈이 중 짧은 기간을 제외하고, 성충 전 단계와 성충 단계는 물고기에서 이동할 수 있으며, 경우에 따라서는 숙주 물고기 사이를 이동할 수 있습니다.몸집이 큰 성체 암컷은 배 뒤쪽과 등쪽 중간선에서 비교적 평평한 신체 표면을 차지하고 있으며, 실제로 이러한 [22]부위에서 성체 이전과 수컷을 능가할 수 있다.

섭식 습관

나우피어와 요각류는 숙주를 찾을 때까지 먹이를 먹지 않고 내생 식품 저장소에서 산다.일단 숙주에 부착되면 요각류 단계는 먹이를 먹기 시작하고 첫 번째 성모 단계로 발전하기 시작합니다.요각류나 성모충은 발달된 위장관을 가지고 있으며 부착 범위 내의 숙주 점액과 조직을 먹고 산다.성충과 성충의 이, 특히 중력의 암컷은 공격적인 먹이이며, 어떤 경우에는 조직과 점액 외에 혈액을 섭취합니다.혈액은 특히 성인 여성의 소화기관에서 자주 볼 수 있다.연어는 많은 양의 트립신을 숙주의 점액에 분비하는 것으로 알려져 있는데, 이것은 먹이와 [7][23]소화를 도울 수 있습니다.프로스타글란딘 E2와 같은 다른 화합물도 L. 연어 분비물에서 확인되었으며, 공급 [7][24]사이트에서 조절함으로써 숙주의 면역 반응을 피하는 데 도움을 주거나 기생충을 제공할 수 있다.멍게가 질병의 매개체인지는 알려지지 않았지만 [25]오염된 물고기의 조직에 부착하고 먹이로 삼는 박테리아와 바이러스의 매개체일 수 있다.

질병

병리학

그레이비드 암컷 레페오피루스 연어, 살모살라

바다 이는 부착과 먹이 섭취 부위에 물리적, 효소적 피해를 입히는데, 이는 숙주 종, 나이, 물고기의 전반적인 건강 등 여러 요인에 따라 그 성격과 심각도가 달라지는 마모와 같은 병변을 일으킨다.스트레스를 받은 물고기가 특히 감염되기 쉬운지는 불분명하다.바다 이 감염은 먹이와 부착이 점액 농도의 변화를 일으키고 상피를 손상시켜 혈액과 체액의 손실, 전해질 변화, 그리고 코티솔 방출을 야기하기 때문에 물고기의 일반적인 만성 스트레스 반응을 일으킨다.이것은 연어의 면역 반응을 감소시키고 다른 질병에 걸리기 쉽게 만들 수 있으며 성장과 성과를 [26][27]감소시킬 수 있습니다.

피해의 정도는 바다 이의 종류, 현재 발달 단계, 물고기 위에 있는 바다 이의 수에 따라서도 달라진다.대서양 연어의 숙주 조직 반응에 대한 증거는 발달 단계에 관계없이 먹이 공급 및 부착 부위에 거의 없다.반면 코호와 분홍색 연어는 상피과형성과 염증을 특징으로 하는 L. 연어에 강한 조직반응을 보인다.이것은 이러한 연어과의 [7]감염 첫 주 안에 기생충을 거부시키는 결과를 초래한다.L. salmonis에 의해 양식된 대서양 연어와 야생 연어(Oncorhynchus nerka)의 심한 감염은 깊은 병변, 특히 머리 부분에 두개골까지 노출시킬 수 있습니다.

야생 물고기와 양식 물고기의 상호작용

일부 증거는 연어 양식장에서 번성하는 바다 이가 인근 야생 어린 연어로 번져 이 [28]개체군을 황폐화시킬 수 있다는 것을 보여준다.바다 이, 특히 연어와 C. clemensi와 C. logercreseyi를 포함한 다양한 칼리구스 종은 양식 연어와 야생 [3][29]연어 모두에 치명적인 침입을 일으킬 수 있습니다.바다 이는 자유수영, 플랑크톤성 나우플리, 요각류 유충 단계에서 야생 연어의 피부에 달라붙어 며칠 [30][31][32]동안 지속될 수 있습니다.많은 수의 인구가 밀집한 오픈넷 연어 양식장은 예외적으로 많은 양의 바다 이를 발생시킬 수 있습니다.많은 수의 오픈넷 양식장을 포함한 강 하구에 노출되었을 때, 수학적인 모델들은 많은 어린 야생 연어가 감염될 수 있다는 것을 암시했다. 그렇지 않으면 위험한 수의 바다 이에서 생존할 수 있지만, 작고 껍질이 얇은 어린 연어는 바다로 이주하는 매우 취약하다.최근 몇 년 동안 바다 송어의 개체수는 바다 [35]이 및 Krkosek 등의 침입으로 인해 심각하게 감소했을 수 있다.캐나다 태평양 연안에서는 일부 지역에서 이로 인한 연어의 사망률이 80% [28]이상이라고 주장했습니다.몇몇 연구에 따르면,[36] 일부 지역에서는 어획량에 장기적인 피해가 없는 것으로 나타났으며, 2002년에 발생한 야생 연어의 개체수 감소는 "바다니 이외의 것"[37]에 의한 것이었다.하지만, 야생 물고기에 이가 반복적으로 나타나는 것은 아일랜드, 영국, 노르웨이, 캐나다,[38] 그리고 칠레의 연어 양식장이 있는 지역에서만 발생했다.요각류 동물들의 현장 표본 추출과 수문학적 및 개체군 모델은 양식장의 L. 연어가 어떻게 바다 쪽으로 이동하는 연어류의 대량 침입을 일으킬 수 있는지 보여주며,[15] 이러한 영향은 양식장으로부터 최대 30km(19mi)까지 발생할 수 있다.

몇몇 과학적 연구들은 우리에 갇힌 양식된 연어가 주변의 야생 연어 [34]개체 수를 파괴할 수 있을 정도로 이빨을 품고 있다는 것을 시사했다.다른 연구에서는 양식 어류의 이가 좋은 양식업과 적절한 관리 조치가 수행되면 야생 어류에 상대적으로 영향을 미치지 않는 것으로 나타났다(섹션:연어 [39]양식장 관리).특히 캐나다, 영국(스코틀랜드), 아일랜드 및 노르웨이에서 야생 양식 물고기의 상호작용을 확립하기 위한 추가 연구가 진행 중이다.야생/양식 어류와 바다 이의 상호작용을 연구하기 위한 프로토콜과 지침이 포함된 참조 매뉴얼이 [40]출판되었습니다.

양식업

연어 양식장 관리

이것은 Pike & Wadsworth,[20] McVicar [41]및 Costello에 [11]의해 검토되었습니다.바다 이를 위한 통합 해충 관리 프로그램은 캐나다,[42][43] 노르웨이,[39] 스코틀랜드,[44] 아일랜드 [45]등 여러 국가에서 도입되거나 권장되고 있습니다.효과적인 멍니 모니터링 프로그램과 함께 멍니[46] 풍부성의 잠재적 위험 인자로서의 역학 인자의 식별은 연어 [47]양식장의 멍니 수준을 효과적으로 감소시키는 것으로 나타났다.

천적

5종의 라브리다(Labridae)를 포함한 청소용 물고기는 노르웨이와 스코틀랜드, 셰틀랜드, 아일랜드의 양식장에서 [48]덜 사용됩니다.그들의 잠재력은 태평양, 대서양 캐나다, 칠레와 같은 다른 양식장 지역에서는 연구되지 않았다.

농사짓기

좋은 양식 기술로는 낙농, 죽은 물고기와 병든 물고기의 제거, 그물 오염 방지 등이 있습니다.대부분의 양식장에서는 바다 이를 양식장 건강에 대한 우려나 주변 해역의 야생 어류에 영향을 미칠 수 있는 수준 이하로 유지하기 위한 만 관리 계획이 시행되고 있다.여기에는 연도 등급 분리, 정해진 기준에 따른 바다니 계수 및 기록, 바다니 계수 증가 시 기생체 사용, 기생체 내성 모니터링 등이 포함된다.

연어 사육

초기 발견들은 대서양 연어가 칼리구스 [49]엘라다투스에 민감하게 반응하는 유전적 변화를 시사했다.그 후 연구들이 특성 [50]표지를 식별하기 시작했고, 최근의 연구들은 대서양 연어의 L. 연어에 대한 민감성이 특정 과에 대해 확인될 수 있고, MHC 클래스 II와 [51]이의 민감성 사이에 연관성이 있다는 것을 보여주었다.

2012년 10월, 식료품 체인인 Sobeys는 바다니에 대한 우려가 제기된 후 캐나다 연해주의 84개 점포에서 대서양 연어를 통째로 철수시켰다.[52]

2017년 노르웨이의 연어 가격은 Sea Lice 발생으로 3개월 동안 15% 상승했습니다.[53]

치료법

담수

민물은 때때로 바다 이를 죽이기에 충분하고, 연어는 결국 민물에서 헤엄치기 때문에 그들은 해를 [54]입지 않는다.

의약품 및 백신

양식 어류의 치료제 범위는 종종 규제 처리 제한으로 인해 제한되었다.사용되는 모든 약물은 환경에 미치는 영향과 [55][56]위험에 대해 평가되었다.기생충은 다음과 같이 목욕 및 인피드 처리로 분류됩니다.

목욕 처리

목욕 치료제를 사용하는 것에는 장점과 단점이 있다.목욕 치료는 더 어렵고 투여하기 위해 더 많은 인력이 필요하며, 치마나 방수포를 약물을 담기 위해 우리 주위에 배치해야 한다.단기간에 만 전체를 치료하는 것은 현실적으로 불가능하기 때문에 재감염 예방은 어려운 과제이다.물의 양이 부정확하기 때문에 필요한 농도는 보장되지 않는다.약물의 양을 줄이기 위해 물고기 떼가 몰려드는 것 또한 물고기들에게 스트레스를 줄 수 있다.비록 물고기를 우물 보트로 옮겼다가 다시 우리로 돌려보내는 것은 스트레스를 줄 수 있지만, 최근 약물을 담은 우물 보트의 사용은 집중력과 환경 문제를 모두 감소시켰다.목욕 치료의 주요 장점은 여러 가지 이유로 인해 섭취하는 약물의 양이 달라질 수 있는 인피드 치료와 대조적으로 모든 물고기가 동등하게 취급된다는 것입니다.

유기인산염

유기인산염은 아세틸콜린에스테라아제 억제제이며 목욕 치료제로 투여할 경우 흥분성 마비를 일으켜 멍니를 사망에 이르게 한다.디클로르보스는 유럽에서 여러 해 동안 사용되었고 나중에 운영자들이 [57]다루기에 안전한 살모산의 활성 성분인 아자메티포스로 대체되었다.아자메티포스는 수용성이며 환경에서 비교적 빨리 분해된다.1990년대 중반 노르웨이에서 유기인산염에 대한 내성이 생기기 시작했는데,[58] 이는 돌연변이에 의해 아세틸콜린에스테라아제가 바뀌었기 때문으로 보인다.SLISE, 에마멕틴 벤조산염의 도입으로 사용이 상당히 감소했습니다.

피레트로이드

피레트로이드는 신경세포에 있는 나트륨 채널의 직접적인 자극제로, 빠른 탈분극과 경련성 마비를 유발하여 사망에 이르게 한다.사용된 약물은 숙주에 의해 천천히 흡수되고 흡수된 후 빠르게 대사되기 때문에 기생충에게 그 효과는 특이하다.시퍼메트린(Excis, Betamax)과 델타메트린(Alphamax)은 바다 이를 제어하는 데 일반적으로 사용되는 두 개의 피레트로이드이다.피레트로이드에 대한 저항성은 노르웨이에서 보고된 바 있으며, 피레트로이드가 채널을 [59]활성화하지 못하게 하는 나트륨 채널의 구조적 변화로 이어지는 돌연변이에 기인하는 것으로 보인다.에마멕틴 안식향산염에서 관찰된 저항성의 증가와 함께 대체 치료제로 델타메트린의 사용이 증가하고 있다.

국소 소독제

과산화수소(350~500mg/L, 20분간)로 물고기를 목욕시키면 이동성 멍게가 제거된다.이것은 HO가 물과 산소와 분리되기22 때문에 환경 친화적이지만, 수온에 따라 물고기뿐만 아니라 [60]작업자에게도 독성이 있을 수 있습니다.그것은 물고기에서 바다 이를 떨어뜨려 다른 물고기와 다시 붙어 감염을 일으킬 수 있게 하는 것으로 보인다.

인피드 처리

인피드 시술은 목욕 시술보다 관리가 쉽고 환경 위험을 덜 초래합니다.사료는 보통 약물로 코팅되며 기생충에 대한 약물의 분배는 기생충에 대한 충분한 양의 약물의 약동학에 의존합니다.이 약물은 기생충에 대한 선택 독성이 높고, 지질 용해성이 매우 높아 약 2개월 동안 충분히 작용하며, 분해되지 않은 약물은 환경에 대한 우려가 거의 없을 정도로 천천히 배설된다.

애버멕틴스

애버멕틴은 대환상 락톤 계열에 속하며 바다 이를 죽이는 사료 내 치료제로 사용되는 주요 약물이다.첫 번째 사용된 에버멕틴은 치료 수준에 근접한 용량에서 이버멕틴이었으며 제조사에 의해 어류에 대한 법적 승인을 위해 제출되지 않았다.Ivermectin은 일부 물고기에 독성이 있었고, 혈액-뇌 장벽을 넘는 약물의 능력으로 인해 진정과 중추신경계 우울증을 유발했다.제제 [61]SLICE의 활성제인 에마멕틴벤조산염은 1999년부터 사용되었으며 어류에서 더 큰 안전 마진을 가지고 있다.하루에 50μg/kg으로 7일간 투여하고 2개월간 효과가 있어 찰리무스와 이동성 단계를 모두 죽인다.철수 시간은 캐나다에서는[62] 68일에서 노르웨이에서는 175도까지 관할권에 따라 달라집니다.에버멕틴은 절지동물 신경근육조직에서 글루탐산염화물 채널을 열어 과분극과 유동 마비를 일으켜 사망에 이르게 한다.칠레의 Chalimus Rogercreseyi와 북대서양 양식장의 L. salmonis에서 내성이 발견되었습니다.내성은 대환상 [63]락톤에 대한 [64]선충 저항에서 보여진 것과 유사한 P-글리코프로틴의 상향 조절로 이어지는 약물의 장기 사용에 기인할 수 있다.

성장조절제

칼리사이드 [65]제제의 활성제인 테플루벤즈론은 키틴 합성 억제제로 탈모를 방지한다.따라서 바다니 유충 단계의 발달을 막지만 성충에게는 영향을 미치지 않는다.권장 [55]농도로는 나타나지 않았지만, 주로 비표적 갑각류의 털트 사이클에 영향을 미칠 수 있다는 우려 때문에 바다 이의 방제에만 드물게 사용되어 왔다.

백신

백신 대상으로서 특히 위장관과 생식 내분비 경로에서 다양한 항원을 검사하기 위한 많은 연구가 진행 중이지만, 바다니에 대한 백신은 현재까지 보고된 바 없다.두 개의 발표된 연구는 백신 후보 항원을 연어에 대해 테스트했고, 이는 감염률을 [66][67]감소시켰다.

광학 방식

파장 550nm에서 작동하는 펄스 레이저를 사용하여 [68]파장을 제거하는 것이 박리 전략의 최근 진보입니다.

기타 관심 사항

브런치우라스과, 아구로이드목은 어금니로 알려져 있으며 민물에 기생한다.

「 」를 참조해 주세요.

레퍼런스

  1. ^ a b Shane T. Ahyong; James K. Lowry; Miguel Alonso; Roger N. Bamber; Geoffrey A. Boxshall; Peter Castro; Sarah Gerken; Gordan S. Karaman; Joseph W. Goy; Diana S. Jones; Kenneth Meland; D. Christopher Rogers; Jörundur Svavarsson (2011). "Subphylum Crustacea Brünnich, 1772" (PDF). In Z.-Q. Zhang (ed.). Animal biodiversity: an outline of higher-level classification and survey of taxonomic richness. Zootaxa. Vol. 3148. pp. 165–191.
  2. ^ T. Chad Walter & Geoff Boxshall (2011). Walter TC, Boxshall G (eds.). "Caligidae". World of Copepods database. World Register of Marine Species. Retrieved January 12, 2012.
  3. ^ a b S. Bravo (2003). "Sea lice in Chilean salmon farms". Bulletin of the European Association of Fish Pathologists. 23 (4): 197–200.
  4. ^ R. Yazawa; M. Yasuike; J. Leong; K. R. von Schalburg; G. A. Cooper; M. Beetz-Sargent; A. Robb; W. S. Davidson; S. R. Jones; B. F. Koop (2008). "EST and mitochondrial DNA sequences support a distinct Pacific form of salmon louse, Lepeophtheirus salmonis". Marine Biotechnology. 10 (6): 741–749. doi:10.1007/s10126-008-9112-y. PMID 18574633.
  5. ^ Geoff Boxshall (2011). Walter TC, Boxshall G (eds.). "Caligus O.F. Müller, 1785". World of Copepods database. World Register of Marine Species. Retrieved January 12, 2012.
  6. ^ T. Chad Walter & Geoff Boxshall (2011). Walter TC, Boxshall G (eds.). "Lepeophtheirus von Nordmann, 1832". World of Copepods database. World Register of Marine Species. Retrieved January 12, 2012.
  7. ^ a b c d G. N. Wagner; M. D. Fast; S. C. Johnson (2008). "Physiology and immunology of Lepeophtheirus salmonis infections of salmonids". Trends in Parasitology. 24 (4): 176–183. doi:10.1016/j.pt.2007.12.010. PMID 18329341.
  8. ^ S. R. M. Jones; G. Prosperi-Porta; E. Kim; P. Callow; N. B. Hargreaves (2006). "The occurrence of Lepeophtheirus salmonis and Caligus clemensi (Copepoda: Caligidae) on threespine stickleback Gasterosteus aculeatus in coastal British Columbia". Journal of Parasitology. 92 (3): 473–480. doi:10.1645/GE-685R1.1. PMID 16883988. S2CID 41370981.
  9. ^ M. Costelloe; J. Costelloe; G. O'Donohoe; N. J. Coghlan; M. Oonk; Y. van der Heijden (1998). "Planktonic distribution of sea lice larvae Lepeophtheirus salmonis, in Killary Harbour, west coast of Ireland" (PDF). Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. 78 (3): 853–874. doi:10.1017/S0025315400044830.
  10. ^ a b R. L. Genna; W. Mordue; A. W. Pike; A. J. Mordue-Luntz (2005). "Light intensity, salinity, and host velocity influence presettlement intensity and distribution on hosts by copepodids of sea lice, Lepeophtheirus salmonis". Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 62 (12): 2675–2682. doi:10.1139/f05-163. S2CID 84155984.
  11. ^ a b c d e f M. J. Costello (2006). "Ecology of sea lice parasitic on farmed and wild fish" (PDF). Trends in Parasitology. 22 (10): 475–483. doi:10.1016/j.pt.2006.08.006. PMID 16920027.
  12. ^ Kenneth M. Brooks (2005). "The effects of water temperature, salinity, and currents on the survival and distribution of the infective copepodid stage of sea lice (Lepeophtheirus salmonis) originating on Atlantic salmon farms in the Broughton Archipelago of British Columbia, Canada". Reviews in Fisheries Science. 13 (3): 177–204. doi:10.1080/10641260500207109. S2CID 84252746.
  13. ^ a b P. A. Heuch; A. Parsons; K. Boxaspen (1995). "Diel vertical migration: a possible host finding mechanism in salmon lice (Lepeophtheirus salmonis) copepodid?". Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 52 (4): 681–689. doi:10.1139/f95-069.
  14. ^ M. A. McKibben; D. W. Hay (2004). "Distributions of planktonic sea lice larvae Lepeophtheirus salmonis in the inter-tidal zone in Loch Torrindon, western Scotland in relation to salmon farm production cycles". Aquaculture Research. 35 (8): 742–750. doi:10.1111/j.1365-2109.2004.01096.x.
  15. ^ a b M. J. Costello (2009). "How sea lice from salmon farms may cause wild salmonid declines in Europe and North America and be a threat to fishes elsewhere". Proceedings of the Royal Society B. 276 (1672): 3385–3394. doi:10.1098/rspb.2009.0771. PMC 2817184. PMID 19586950.
  16. ^ a b S. C. Johnson; L. J. Albright (1991). "The developmental stages of Lepeophtheirus salmonis (Krøyer, 1837) (Copepoda: Caligidae)". Canadian Journal of Zoology. 69 (4): 929–950. doi:10.1139/z91-138.
  17. ^ a b M. Anstensrud (1990). "Moulting and mating in Lepeophtheirus pectoralis (Copepoda: Caligidae)". Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. 70 (2): 269–281. doi:10.1017/S0025315400035396.
  18. ^ A. Mustafa; G. A. Conboy; J. F. Burka (2001). "Life-span and reproductive capacity of sea lice, Lepeophtheirus salmonis, under laboratory conditions". Aquaculture Association of Canada Special Publication. 4: 113–114.
  19. ^ a b Thomas A. Schram (1993). "Supplementary description of the developmental stages of Lepeophtheirus salmonis (Krøyer, 1837) (Copepoda: Caligidae)". In G. A. Boxshall; D. Defaye (eds.). Pathogens of Wild and Farmed Fish: Sea Lice. Chichester: Ellis Horwood. pp. 30–50. ISBN 978-0-13-015504-7.
  20. ^ a b A. W. Pike; S. L. Wadsworth (1999). Sealice on salmonids: their biology and control. Advances in Parasitology. Vol. 44. pp. 233–337. doi:10.1016/S0065-308X(08)60233-X. ISBN 978-0-12-031744-8. PMID 10563397.
  21. ^ J. E. Bron; C. Sommerville; M. Jones; G. H. Rae (1991). "The settlement and attachment of early stages of the salmon louse, Lepeophtheirus salmonis (Copepoda: Caligidae) on the salmon host Salmo salar". Journal of Zoology. 224 (2): 201–212. doi:10.1111/j.1469-7998.1991.tb04799.x.
  22. ^ C. D. Todd; A. M. Walker; J. E. Hoyle; S. J. Northcott; A. F. Walker; M. G. Ritchie (2000). "Infestations of wild adult Atlantic salmon (Salmo salar L.) by the ectoparasitic copepod sea louse Lepeophtheirus salmonis (Krøyer): prevalence, intensity and the spatial distribution of males and females on the host fish". Hydrobiologia. 429 (2–3): 181–196. doi:10.1023/A:1004031318505. S2CID 31842097.
  23. ^ Kara J. Firth; Stewart C. Johnson; Neil W. Ross (2000). "Characterization of proteases in the skin mucus of Atlantic salmon (Salmo salar) infected with the salmon louse (Lepeophtheirus salmonis) and in whole-body louse homogenates". Journal of Parasitology. 86 (6): 1199–1205. doi:10.1645/0022-3395(2000)086[1199:COPITS]2.0.CO;2. JSTOR 3285000. PMID 11191891.
  24. ^ M. D. Fast; N. W. Ross; S. C. Johnson (2005). "Prostaglandin E2 modulation of gene expression in an Atlantic salmon (Salmo salar) macrophage-like cell line (SHK-1)". Developmental & Comparative Immunology. 29 (11): 951–963. doi:10.1016/j.dci.2005.03.007. PMID 15936074.
  25. ^ A. Nylund; B. Bjørknes; C. Wallace (1991). "Lepeophtheirus salmonis – a possible vector in the spread of diseases on salmonids". Bulletin of the European Association of Fish Pathologists. 11 (6): 213–216.
  26. ^ S. C. Johnson; L. J. Albright (1992). "Effects of cortisol implants on the susceptibility and the histopathology of the responses of naive coho salmon Oncorhynchus kisutch to experimental infection with Lepeophtheirus salmonis (Copepoda : Caligidae)". Diseases of Aquatic Organisms. 14: 195–205. doi:10.3354/dao014195.
  27. ^ N. W. Ross; K. J. Firth; A. Wang; J. F. Burka; S. C. Johnson (2000). "Changes in hydrolytic enzyme activities of naive Atlantic salmon (Salmo salar) skin mucus due to infection with the salmon louse (Lepeophtheirus salmonis) and cortisol implantation". Diseases of Aquatic Organisms. 41 (1): 43–51. doi:10.3354/dao041043. PMID 10907138.
  28. ^ a b M. Krkosek; J. S. Ford; A. Morton; S. Lele; R. A. Myers; M. A. Lewis (2007). "Declining wild salmon populations in relation to parasites from farm salmon". Science. 318 (5857): 1772–5. Bibcode:2007Sci...318.1772K. doi:10.1126/science.1148744. PMID 18079401. S2CID 86544687.
  29. ^ "Sea lice and salmon: elevating the dialogue on the farmed-wild salmon story" (PDF). Watershed Watch Salmon Society. 2004. Archived from the original (PDF) on December 14, 2010. Retrieved January 15, 2010.
  30. ^ A. Morton; R. Routledge; C. Peet; A. Ladwig (2004). "Sea lice (Lepeophtheirus salmonis) infection rates on juvenile pink (Oncorhynchus gorbuscha) and chum (Oncorhynchus keta) salmon in the nearshore marine environment of British Columbia, Canada". Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 61 (2): 147–157. doi:10.1139/f04-016.
  31. ^ Corey Ryan Peet (2007). Interactions between sea lice (Lepeoptheirus salmonis and Caligus clemensii), juvenile salmon (Oncorhynchus keta and Oncorhynchus gorbuscha) and salmon farms in British Columbia (M.Sc. thesis). University of Victoria. hdl:1828/2346.
  32. ^ M. Krkošek; A. Gottesfeld; B. Proctor; D. Rolston; C. Carr-Harris; M. A. Lewis (2007). "Effects of host migration, diversity and aquaculture on sea lice threats to Pacific salmon populations". Proceedings of the Royal Society B. 274 (1629): 3141–3149. doi:10.1098/rspb.2007.1122. PMC 2293942. PMID 17939989.
  33. ^ A. Morton; R. Routledge; M. Krkošek (2008). "Sea louse infestation in wild juvenile salmon and Pacific herring associated with fish farms off the east-central coast of Vancouver Island, British Columbia". North American Journal of Fisheries Management. 28 (2): 523–532. doi:10.1577/M07-042.1.
  34. ^ a b M. Krkošek; M. A. Lewis; A. Morton; L. N. Frazer; J. P. Volpe (2006). "Epizootics of wild fish induced by farm fish". Proceedings of the National Academy of Sciences. 103 (42): 15506–15510. doi:10.1073/pnas.0603525103. PMC 1591297. PMID 17021017.
  35. ^ Charles Clover (2004). The End of the Line: How Overfishing is Changing the World and What We Eat. London: Ebury Press. ISBN 978-0-09-189780-2.
  36. ^ S. R. M. Jones; N. B. Hargreaves (2009). "Infection threshold to estimate Lepeophtheirus salmonis-associated mortality among juvenile pink salmon". Diseases of Aquatic Organisms. 84 (2): 131–137. doi:10.3354/dao02043. PMID 19476283.
  37. ^ Gary D. Marty; S. M. Saksida; T. J. Quinn II (2010). "Relationship of farm salmon, sea lice, and wild salmon populations". Proceedings of the National Academy of Sciences. 107 (52): 22599–22604. Bibcode:2010PNAS..10722599M. doi:10.1073/pnas.1009573108. PMC 3012511. PMID 21149706.
  38. ^ M. J. Costello (2009). "The global economic cost of sea lice to the salmonid farming industry". Journal of Fish Diseases. 32 (1): 115–118. doi:10.1111/j.1365-2761.2008.01011.x. PMID 19245636.
  39. ^ a b Peter Andreas Heuch; Pål Arne Bjørn; Bengt Finstad; Jens Christian Holst; Lars Asplin; Frank Nilsen (2005). "A review of the Norwegian 'National Action Plan Against Salmon Lice on Salmonids': The effect on wild salmonids". Aquaculture. 246 (1–4): 79–92. doi:10.1016/j.aquaculture.2004.12.027.
  40. ^ "Protocols and Guidelines: A Reference Manual for Research Involving Wild/Cultured Fish Interactions with Sea Lice". Pacific Salmon Forum. Retrieved September 17, 2009.
  41. ^ Alasdair H. McVicar (2004). "Management actions in relation to the controversy about salmon lice infections in fish farms as a hazard to wild salmonid populations". Aquaculture Research. 35 (8): 751–758. doi:10.1111/j.1365-2109.2004.01097.x.
  42. ^ Integrated Pest Management of Sea Lice in Salmon Aquaculture. Health Canada. 2003. ISBN 978-0-662-34002-7. Retrieved March 26, 2010.
  43. ^ "Sea Lice Management Strategy 2007/2008" (PDF). British Columbia Ministry of Agriculture and Lands. Retrieved September 11, 2009.
  44. ^ A. J. Rosie; P. T. R. Singleton (2002). "Discharge consents in Scotland". Pest Management Science. 58 (6): 616–621. doi:10.1002/ps.475. PMID 12138628.
  45. ^ B. Grist (2002). "The regulatory system for aquaculture in the Republic of Ireland". Pest Management Science. 58 (6): 609–615. doi:10.1002/ps.512. PMID 12138627.
  46. ^ C. W. Revie; G. Getinby; J. W. Treasurer; C. Wallace (2003). "Identifying epidemiological factors affecting sea lice Lepeophtheirus salmonis abundance on Scottish salmon farms using general linear models". Diseases of Aquatic Organisms. 57 (1–2): 85–95. doi:10.3354/dao057085. PMID 14735925.
  47. ^ S. Saksida; G. A. Karreman; J. Constantine; A. Donald (2007). "Differences in Lepeophtheirus salmonis abundance levels on Atlantic salmon farms in the Broughton Archipelago, British Columbia, Canada". Journal of Fish Diseases. 30 (6): 357–366. doi:10.1111/j.1365-2761.2007.00814.x. PMID 17498179.
  48. ^ James W. Treasurer (2002). "A review of potential pathogens of sea lice and the application of cleaner fish in biological control". Pest Management Science. 58 (6): 546–558. doi:10.1002/ps.509. PMID 12138621.
  49. ^ A. Mustafa; B. M. MacKinnon (1999). "Genetic variation in susceptibility of Atlantic salmon to the sea louse Caligus elongatus Nordmann 1882". Canadian Journal of Zoology. 77 (8): 1332–1335. doi:10.1139/cjz-77-8-1332.
  50. ^ Catherine S. Jones; Anne E. Lockyer; Eric Verspoor; Christopher J. Secombes; Leslie R. Noble (2002). "Towards selective breeding of Atlantic salmon for sea louse resistance: approaches to identify trait markers". Pest Management Science. 58 (6): 559–568. doi:10.1002/ps.511. PMID 12138622.
  51. ^ K. A. Glover; U. Grimholt; H. G. Bakke; F. Nilsen; A. Storset; Ø. Skaala (2007). "Major histocompatibility complex (MHC) variation and susceptibility to the sea louse Lepeophtheirus salmonis in Atlantic salmon Salmo salar". Diseases of Aquatic Organisms. 76 (1): 57–66. doi:10.3354/dao076057. PMID 17718166.
  52. ^ "Grocery chain pulls whole salmon following Facebook posts - Your Community".
  53. ^ "Sea lice outbreak sends salmon prices soaring". Fox News. 2017-01-24.
  54. ^ "Ship that can wash sea lice from farmed salmon now on Vancouver Island". CTV News. The Canadian Press. 23 April 2019. Retrieved 25 April 2019.
  55. ^ a b L. E. Burridge (2003). "Chemical use in marine finfish aquaculture in Canada: A review of current practices and possible environmental effects". Canadian Technical Reports of Fisheries and Aquatic Sciences. 2450: 97–131.
  56. ^ K. Haya; L. E. Burridge; I. M. Davies; E. Ervik (2005). A review and assessment of environmental risk of chemicals used for the treatment of sea lice infestations of cultured salmon. Handbook of Environmental Chemistry. Vol. 5. pp. 305–340. doi:10.1007/b136016. ISBN 978-3-540-25269-6.
  57. ^ I. Denholm; G. J. Devine; T. E. Horsberg; S. Sevatdal; A. Fallang; D. V. Nolan; R. Powell (2002). "Analysis and management of resistance to chemotherapeutants in salmon lice Lepeophtheirus salmonis (Copepoda: Caligidae)". Pest Management Science. 58 (6): 528–536. doi:10.1002/ps.482. PMID 12138619.
  58. ^ Anders Fallang; Jennifer Mara Ramsay; Sigmund Sevatdal; John F. Burka; Philip Jewess; K. Larry Hammell; Tor E. Horsberg (2004). "Evidence for occurrence of an organophosphate-resistant type of acetylcholinesterase in strains of sea lice (Lepeophtheirus salmonis Krøyer)". Pest Management Science. 60 (12): 1163–1170. doi:10.1002/ps.932. PMID 15578596.
  59. ^ A. Fallang; I. Denholm; T. E. Horsberg; M. S. Williamson (2005). "Novel point mutation in the sodium channel gene of pyrethroid-resistant sea lice Lepeophtheirus salmonis (Crustacea: Copepoda)". Diseases of Aquatic Organisms. 65 (2): 129–136. doi:10.3354/dao065129. PMID 16060266.
  60. ^ A. N. Grant (2002). "Medicines for sea lice". Pest Management Science. 58 (6): 521–527. doi:10.1002/ps.481. PMID 12138618.
  61. ^ "Slice* Premix". Schering-Plough Animal Health. Archived from the original on 2009-09-17. Retrieved September 11, 2009.
  62. ^ "Depletion of Emamectin Benzoate (SLICE®) from Skeletal Muscle (and Skin) of Atlantic Salmon (Salmo salar) following a Multiple Oral (Dietary) 50 µg/kg Dose Regimen, in Seawater at 10 ±1°C; One Laboratory and Two Field-based trials". MG-06-04-004. Fisheries and Oceans Canada. 31 March 2007. Retrieved 4 March 2011.
  63. ^ N. D. Tribble; J. F. Burka; F. S. B. Kibenge; G. M. Wright (2008). "Identification and localization of a putative ATP-binding cassette transporter in sea lice (Lepeophtheirus salmonis) and host Atlantic salmon (Salmo salar)". Parasitology. 135 (2): 243–255. doi:10.1017/S0031182007003861. PMID 17961285. S2CID 25656517.
  64. ^ Anne Lespine; Michel Alvinerie; Jozef Vercruysse; Roger K. Prichard; Peter Geldhof (2008). "ABC transporter modulation: a strategy to enhance the activity of macrocyclic lactone anthelmintics". Trends in Parasitology. 24 (7): 293–298. doi:10.1016/j.pt.2008.03.011. PMID 18514030.
  65. ^ EMEA (1999). "Teflubenzuron, summary report" (PDF). Archived from the original (PDF) on 2007-07-10. Retrieved September 11, 2009.
  66. ^ Grayson, T. H.; John, R. J.; Wadsworth, S.; Greaves, K.; Cox, D.; Roper, J.; Wrathmell, A. B.; Gilpin, M. L.; Harris, J. E. (1995-12-01). "Immunization of Atlantic salmon against the salmon louse: identification of antigens and effects on louse fecundity". Journal of Fish Biology. 47: 85–94. doi:10.1111/j.1095-8649.1995.tb06046.x.
  67. ^ Carpio, Yamila; Basabe, Liliana; Acosta, Jannel; Rodríguez, Alina; Mendoza, Adriana; Lisperger, Angélica; Zamorano, Eugenio; González, Margarita; Rivas, Mario (2011). "Novel gene isolated from Caligus rogercresseyi: A promising target for vaccine development against sea lice". Vaccine. 29 (15): 2810–2820. doi:10.1016/j.vaccine.2011.01.109. PMID 21320542.
  68. ^ "Lice-Hunting Underwater Drone Protects Salmon With Lasers". IEEE Spectrum: Technology, Engineering, and Science News. Retrieved 2017-06-05.

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