재생(생물학)

Regeneration (biology)
해바라기 별, 팔 재생
재생되는 꼬리를 가진 왜소한 노랑머리 도마뱀붙이

생물학에서 재생유전체, 세포, 유기체, 그리고 생태계가 교란이나 [1]손상을 일으키는 자연적인 변동이나 사건에 탄력적으로 반응하도록 만드는 재생, 복원, 그리고 조직 성장의 과정이다.박테리아에서 [2][3]인간에 이르기까지 모든 종은 재생이 가능하다.재생은 새로운 조직이 손실된 [4]조직과 동일한 경우 완료되거나[4] 괴사 조직 후에 섬유화가 [5]오는 경우[5] 불완전할 수 있습니다.

가장 기본적인 수준에서 재생은 유전자 조절의 분자 과정에 의해 매개되며 세포 증식, 형태 형성 및 세포 [6][7]분화세포 과정을 포함한다.그러나 생물학에서의 재생은 다세포 유기체가 생리적, 형태학적 상태의 무결성을 회복하고 유지할 수 있도록 특징표현형 가소성을 특징짓는 형태 유발 과정을 주로 말한다.유전적 수준 이상으로 재생은 근본적으로 무성 세포 [8]작용에 의해 조절된다.재생은 재생과는 다릅니다.를 들어 히드라는 재생을 하지만 싹트는 방법으로 번식한다.

히드라와 플라나리아 편충은 적응력이 매우 높은 재생 [9]능력으로 오랫동안 모범 유기체 역할을 해왔다.일단 상처를 입으면, 그들의 세포는 활성화되어 장기를 원래의 [10]상태로 되돌린다.꼬리 양서류목인 Caudata사지, 꼬리, 턱, 눈 그리고 다양한 내부 [2]구조를 재생하는 능력으로 볼 때 아마도 재생에 가장 능숙한 척추동물 그룹일 것이다.장기 재생은 메타조아 [9]생물들 사이에서 흔하고 광범위한 적응 능력이다.이와 관련하여, 일부 동물들은 분열, 싹트기, 또는 [8]핵분열을 통해 무성생식을 할 수 있다.예를 들어, 플라나리안 부모는 수축하고 중간에 분할하며,[11] 각각의 절반은 원본의 두 의 클론을 형성하기 위해 새로운 끝을 생성합니다.

극피동물, 가재, 많은 파충류, 그리고 양서류는 조직 재생의 주목할 만한 예를 보여준다.를 들어, 자가 절개술의 경우, 동물이 포획을 피하기 위해 손발이나 꼬리를 떼어낼 때 방어 기능을 한다.사지나 꼬리가 자동 절제된 후, 세포는 활동을 시작하고 조직은 [12][13][14]재생됩니다.어떤 경우에는 절단된 사지가 새로운 [15]개체를 재생시킬 수 있다.대부분의 물고기와 도롱뇽에서 사지의 재생이 제한되고 꼬리 재생은 유충 개구리와 두꺼비(성충이 아님)에서 일어난다.도롱뇽이나 트리톤은 절단 후 팔다리가 계속 자란다.파충류, 첼로니안, 악어 그리고 뱀은 잃어버린 부분을 재생시킬 수 없지만, 많은 종류의 도마뱀, 도마뱀붙이, 이구아나들은 높은 재생 능력을 가지고 있다.보통, 그것은 그들의 꼬리의 일부를 떨어뜨리고 방어 메커니즘의 일부로 재생하는 것을 포함합니다.포식자를 탈출시키다가 포식자가 꼬리를 잡으면 연결이 [16]끊어진다.

생태계

생태계는 재생될 수 있다.숲에 불이 나거나 해충이 발생하는 등 소동이 일어나면 개척종들이 점유하고 공간을 두고 경쟁하며 새롭게 개방된 서식지에 자리를 잡게 된다.묘목의 새로운 성장과 지역사회 집결 과정은 [17][18]생태계의 재생으로 알려져 있다.

세포 분자 기초

동물의 형태 형성에서 패턴 형성은 손상이 발생한 후 세포를 작동시키는 유전적 유도 인자에 의해 조절된다.예를 들어 신경세포는 GAP-43, 튜불린, 액틴, 새로운 신경펩타이드 배열 및 세포생리반응이 [19]손상에서 재생되도록 유도하는 사이토카인과 같은 성장관련 단백질을 발현한다.조직의 최초 발달에 관여하는 많은 유전자들은 재생 과정에서 다시 초기화된다.예를 들어, 제브라피쉬 지느러미의 원초 세포는 성장과 [20]재생 과정에서 호메오박스 msx 계열의 4개의 유전자를 발현합니다.

티슈

전략에는 기존 조직의 재배열, 성체 체세포의 사용, 세포의 탈분화 및/또는 전분화 등이 포함됩니다.또, [1]같은 동물의 다른 조직에서는 복수의 모드가 동작할 수 있습니다.이 모든 전략은 적절한 조직의 극성, 구조 및 [21]: 873 형태를 재정립하는 결과를 초래합니다."발달 과정 동안, 유전자들은 다른 조직으로 분화할 때 세포의 특성을 수정하는 역할을 하는 것으로 활성화된다.발달과 재생은 "재생하기 시작하는 줄기세포의 더미"[22]부종으로 집단 세포의 조정과 구성을 포함한다.세포의 탈분화는 세포가 재생 과정에서 조직을 개조함에 따라 조직 특이적 특성을 잃는 것을 의미한다.이것은 세포의 전이 분화와 혼동되어서는 안 된다. 즉, 세포가 재생 과정에서 조직 특이적 특성을 잃고 나서 다른 종류의 [21]세포로 재분화되는 것이다.

동물에서

절지동물

사지 재생

많은 절지동물들은 부상이나 절개 [23]후에 팔다리와 다른 부속물을 재생시킬 수 있다.재생능력은 발달단계와 탈피능력에 의해 제약된다.

지속적으로 탈피를 하는 갑각류는 [24]일생 동안 재생될 수 있다.탈피 주기는 일반적으로 호르몬에 의해 조절되지만, 사지 절단술은 조기 [23][25]탈피를 유발한다.

귀뚜라미와 같은 반악성 곤충은 마지막 [26]탈피를 하기 전에 님프로서 사지를 재생시킬 수 있습니다.

완전 대사성 곤충은 최종 탈피와 변성 전에 유충으로 부속지를 재생시킬 수 있다.예를 들어 딱정벌레 애벌레는 절단된 팔다리를 재생시킬 수 있다.초파리 애벌레는 팔다리가 없지만 그들의 맹장 원반인 상상 [27]원반을 재생시킬 수 있다.두 시스템 모두 새 조직이 다시 성장하면 [27][28]번영이 지연됩니다.

곤충과 갑각류 동물의 부속지 재생에 기초하는 메커니즘은 매우 [29]보존되어 있다.사지 재생 기간 동안 두 분류군의 종들은 증식하고 성장하여 없어진 [30]조직을 보충하는 발진을 형성한다.

독 재생

전갈을 포함한 거미류는 활성 단백질이 모두 [31]보충되기 전에 독의 양이 대체되기 때문에 재생되는 독의 함량은 원래 독과 다르지만 독을 재생하는 것으로 알려져 있다.

초파리 모형

초파리 드로소필라 멜라노가스터는 재생, 특히 내장과 생식선 [32]재생을 조절하는 분자 메커니즘을 이해하는 데 유용한 모델 유기체입니다.이 조직들에서, 상주 줄기세포는 지속적으로 잃어버린 [33]세포를 재생한다.하마의 신호 경로는 파리에게서 발견되었고 중간구트 재생에 필요한 것으로 밝혀졌다.나중에, 이 보존된 신호 경로는 심장, 간, 피부, 그리고 폐와 [34]장을 포함한 많은 포유동물 조직의 재생에 필수적인 것으로 밝혀졌다.

고리형 동물

많은 고리형 동물(세그먼트 웜)은 [35]재생이 가능합니다.예를 들어, Chaetopterus variopedatusBranchioma nigromaculata는 위도 이등분 [36]후 전후 양쪽 신체 부위를 재생시킬 수 있다.체세포 재생과 생식줄기세포 재생의 관계는 고리모양[37]골격의 분자 수준에서 연구되었다.그러나 거머리는 부분 [38]재생이 불가능한 것으로 보인다.게다가, 그들의 가까운 친척인 브랜치오브델리드도 분할 [38][35]재생이 불가능하다.그러나 요추와 같은 특정 개인은 몇 [38]개의 세그먼트에서만 재생될 수 있다.이 동물들의 분절 재생은 에피모픽이며 발진 [38]형성을 통해 일어난다.부분 재생은 고리 모양의 진화 과정에서 얻어지고 상실되어 왔다.올리고채테에서 볼 수 있듯이, 머리 재생은 세 [38]차례나 상실되었다.

에피모포시스(epimorphosis)와 함께, 사벨라 파보니나와 같은 일부 다발충들은 형태소 [38][39]재생을 경험한다.Morphallaxis는 조직을 재생하기 위해 세포의 탈분화, 변형, 재분화를 포함한다.올리고채에서 형태소 재생이 얼마나 두드러지는지는 현재 잘 알려져 있지 않다.상대적으로 보고가 적지만, 모르팔락시스는 고리형에서 세그먼트 간 재생의 일반적인 모드일 수 있다.L. variegatus의 재생에 이어, 과거 후방 세그먼트는 형태소변성과 일치하는 새로운 신체 방향의 앞부분이 되는 경우가 있다.

절단 후, 대부분의 고리 모양은 급격한 근육수축을 통해 그들의 몸을 봉합할 수 있다.신체 근육의 수축은 감염 예방으로 이어질 수 있다.림노드릴루스 같은 특정 종에서는 외배엽과 중배엽에서 절단 후 몇 시간 이내에 자가분해를 볼 수 있다.절단술은 또한 손상 부위로 세포의 대규모 이동을 유발하며, 이것들은 창상 마개를 형성한다.

극피동물

조직 재생은 극피동물들 사이에 널리 퍼져 있으며 불가사리, 해삼, 성게류에서 잘 기록되어 있다.극피동물에서의 맹장 재생은 적어도 [40]19세기부터 연구되어 왔다.부속물 외에도, 어떤 종들은 내부 장기와 중추 신경계의 [41]일부를 재생시킬 수 있다.상처에 대한 반응으로 불가사리는 손상된 부속지를 자동 절제할 수 있다.자동절개술은 신체 부위, 보통 부속물의 자가절개술이다.심각도에 따라 불가사리는 부속지가 [42]재생되는 4주간의 과정을 거치게 된다.어떤 종들은 에너지의 [43]필요성 때문에 부속지를 재생하기 위해 구강 세포를 보유해야 한다.지금까지 기록된 모든 종에서 가장 먼저 재생되는 장기는 소화관과 관련이 있습니다.따라서 홀로튜리언의 내장 재생에 대한 대부분의 지식은 이 [44]시스템에 관한 것이다.

플라나리아(평판)

Planarians를 이용한 재생 연구는 1800년대 말에 시작되었고 20세기 [43]초에 T.H. Morgan에 의해 대중화 되었다.알레한드로 산체스 알바라도와 필립 뉴마크는 [45]이 동물들의 재생에 기초하는 분자 메커니즘을 연구하기 위해 20세기 초에 플라나리아인들을 모델 유전 유기체로 변형시켰다.플라나리아는 잃어버린 신체 부위를 재생하는 비범한 능력을 보인다.예를 들어, 평면 분할은 세로 또는 가로로 분할되면 두 개의 개별 개체로 재생성됩니다.한 실험에서, T.H. 모건은 플라나리아인의[43] 279분의 1에 해당하는 조각이나 10,000개 정도의 세포를 가진 조각이 1~2주 [46]안에 성공적으로 새로운 벌레로 재생될 수 있다는 것을 발견했다.절단 후, 그루터기 세포는 플라나리아 몸 전체에 있는 [47]만능 세포인 신아세포로부터 형성되는 배반포를 형성합니다.새로운 조직은 모든 플라나리아 [46]세포의 20-30%를 포함하는 신아세포에서 성장한다.최근의 연구는 하나의 신아세포가 [48]재생불능이 된 방사된 동물 전체를 재생시킬 수 있기 때문에 신아세포가 전능하다는 것을 확인시켜주었다.기아를 방지하기 위해 플라나리아인은 에너지를 위해 자신의 세포를 사용할 것이며,[10] 이러한 현상을 탈성장이라고 한다.

양서류

Axolotlnewt의 사지 재생은 광범위하게 연구되고 연구되어 왔다.이 주제에 대한 19세기 연구는 네덜란드(2021년)[49]에서 검토된다.도롱뇽, 도롱뇽 등 우로델 양서류는 네발동물 [50][49]중 가장 높은 재생능력을 보인다.이와 같이, 그들은 에피모픽 재생을 통해 사지, 꼬리, 턱, 망막을 완전히 재생시킬 수 있으며,[51] 새로운 조직으로 기능적 치환을 할 수 있다.도롱뇽의 사지 재생은 크게 두 단계로 이루어집니다.먼저 국소세포가 상처부위에서 탈분화하여 원형으로 [52]변이하여 발진을 형성한다.둘째, 배반세포는 배아발달 [53]과정에서 전개된 유사한 유전 메커니즘을 사용하여 세포증식, 패턴 형성, 세포 분화 및 조직 성장을 하게 된다.궁극적으로, 배반세포는 새로운 [50]구조를 위한 모든 세포를 생성할 것이다.

액솔로틀은 사지를 포함한 다양한 구조를 재생시킬 수 있다.

절단 후, 표피는 1-2시간 안에 그루터기를 덮기 위해 이동하며,[54] 상처 상피라고 불리는 구조를 형성합니다.표피 세포는 계속해서 WE를 통해 이동하며, 그 결과 [55]AEC라고 불리는 두꺼워지고 전문화된 신호 중심이 만들어집니다.다음 며칠 동안, 발진(탈분화 증식 세포의 덩어리)의 형성을 초래하는 기초 그루터기 조직의 변화가 있다.발진이 형성됨에 따라 HoxA와 HoxD와 같은 패턴 형성 유전자는 [56][57]태아에서 사지가 형성되었을 때처럼 활성화된다.팔다리 원위부 끝(즉, 손이나 발인 자동족)의 위치 동일성은 발진에서 먼저 형성됩니다.그런 다음 그루프와 원위부 팁 사이의 중간 위치 동일성이 [56]인터칼레이션이라고 불리는 프로세스를 통해 채워집니다.운동 신경 세포, 근육, 혈관은 재생된 팔다리와 함께 성장하며 절단 전에 존재했던 연결을 다시 확립합니다.이 전체 과정이 걸리는 시간은 동물의 나이에 따라 다 자란 후 약 1개월에서 약 3개월에 걸쳐 다르며, 그러면 사지가 완전히 기능하게 된다.모나시 대학 호주재생의학연구소 연구진은 물질 [58]부스러기를 먹어치우는 대식세포가 제거되면 도롱뇽이 재생 능력을 잃고 대신 [59]흉터 조직을 형성한다는 사실을 발표했다.

역사적으로 사지 재생을 연구하는 연구자는 적었지만, 최근 신양서류인 악솔로틀(Axolotl, Ambystoma mexicanum)을 모범 유전 유기체로 확립하는 데 있어 괄목할 만한 진전이 있었다.이러한 진보는 유전체학, 생물정보학, 그리고 다른 분야의 체세포 형질전환의 진보에 의해 촉진되어 왔으며, 이는 악솔로틀의 [53]사지 재생과 같은 중요한 생물학적 성질의 메커니즘을 조사할 기회를 만들어냈다.AGSC(Ambystoma Genetic Stock Center)는 미국 국립과학재단이 살아있는 스톡 컬렉션으로 지원하는 자급자족하고 번식하는 Axolotl 군락입니다.켄터키 대학에 위치한 AGSC는 유전적으로 잘 특징지어지는 Axolotl 배아, 애벌레 및 성충을 미국과 해외의 실험실에 공급하는 데 전념하고 있습니다.NIH가 출자한 NCRR 조성금은 Ambystoma EST 데이터베이스, 최초의 양서류 유전자 지도와 여러 개의 주석이 달린 분자 데이터베이스 작성 및 연구 커뮤니티 [60]웹 포털의 설립으로 이어졌다.

개구리 모형

무지개들은 배아 [61]발달 중에만 그들의 사지를 재생시킬 수 있다.아누란 유충의 재생 반응을 위해서는 활성산소종([62]ROS)이 필요한 것으로 보인다.ROS 생산은 Wnt 시그널링 경로를 활성화하기 위해 필수적이며, Wnt 시그널링 경로는 다른 [62]시스템의 재생과 관련되어 있습니다.

개구리에서 일단 사지 골격이 발달하면 재생이 되지 않는다(제노푸스는 절단 [61]후 연골 스파이크가 자랄 수 있다.성인 Xenopus laevis재생 의학의 모델 유기체로 사용됩니다.2022년에는 약물과 호르몬의 혼합물(1,4-DPCA, BDNF, 성장호르몬, 레졸빈 D5, 레티노인산)이 24시간 동안 단일 용량으로 성인 X. laevis에서 장기 다리 재생을 유발하는 것으로 나타났다.단 하나의 스파이크 대신, [63]18개월까지 팔다리 끝에 패들 모양의 성장을 얻을 수 있습니다.

히드라

히드라는 Cnidaria문에 속하는 민물 용종의 한 속이며,[64] 몸 전체를 재생하는 능력을 주는 매우 증식적인 줄기세포를 가지고 있다.몸에서 분리된 수백 의 상피 세포보다 더 큰 조각은 [64]더 작은 형태로 재생될 수 있는 능력을 가지고 있다.히드라의 높은 줄기세포 비율은 히드라의 효율적인 재생 [65]능력을 뒷받침한다.

히드라간의 재생은 신체의 기저부에서 발생하는 발 재생과 정점부에서 [64]발생하는 머리 재생으로 일어난다.위영역에서 절단된 재생조직은 극성을 가지며, 극성을 가지며, 극성을 가지며, 극성을 가지며, 극성을 가지며, 이 극성을 가지는 재생조직은 새롭게 재생된 [64]유기체에 두 영역이 존재하도록 한다.두부 재생은 부위의 복잡한 재구성을 필요로 하지만, 발 재생은 조직 [66]복구와 유사하게 훨씬 단순합니다.그러나 발과 머리 재생에는 조직이 손상되면 발생하는 두 가지 뚜렷한 분자 캐스케이드가 있습니다: 조기 부상 반응과 세포 [65]분화를 이끄는 재생 조직의 후속 신호 주도 경로입니다.이 조기부상반응은 창상폐쇄를 위한 상피세포 신장, 창상으로의 간질성 전구체 이동, 세포사망, 세포잔해의 식세포증 및 세포외기질 [65]재구성을 포함한다.

히드라 내 재생은 세포 [67][68]증식 없이 기존 물질의 리모델링으로 재생이 이루어지는 과정인 모르팔락시스(morphallaxis)로 정의된다.히드라를 두 조각으로 자르면, 나머지 절단된 부분은 두 개의 완전히 기능하고 독립적인 히드라를 형성하는데, 이는 두 개의 작은 절단 [64]부분과 거의 같은 크기이다.이것은 새로운 [65]물질이 형성되지 않고 연조직의 교환과 재배열을 통해 발생한다.

아베(새)

이 주제에 대한 제한된 문헌 때문에, 새들은 성인이 되었을 때 매우 제한적인 재생 능력을 가지고 있는 것으로 여겨진다.수탉의 일부 studies[69]은 새들 적당히, 그 동물의 나이, 다른 근육질의 부상당한 조직의 inter-relationship, 그리고 운용의 타입과 같은에서 재생이 발생하는 조건에 따라 약간의 근골격계 s의 완전 재생을 포함할 수 있는 사지의 일부 부분을 재생할 수 있다고 제안했다tru베르버와 골드슈미트(1909)는 거위와 오리가 부분 절단[69] 후 부리를 재생시킬 수 있다는 것을 발견했고 시도로바(1962)는 [70]닭의 비대화를 통한 간 재생을 관찰했다.새들은 또한 소음 손상이나 이독성 약물 [71]손상 후에 달팽이관의 털 세포를 재생시킬 수 있다.이러한 증거에도 불구하고, 현대의 연구들은 조류 종의 회복적 재생이 배아 발달 기간 동안에만 제한된다는 것을 시사한다.일련의 분자생물학 기술은 병아리 [72]배아의 자발적 재생에 기여하는 것으로 알려진 세포 경로를 조작하는 데 성공적이었다.예를 들어 병아리 배아의 팔꿈치 관절 일부를 창 절제 또는 슬라이스 절개를 통해 제거하고 관절 조직 특이 마커와 연골 마커를 비교한 결과 창 절제술은 20개 중 10개가 재생되고 발달 중인 배아와 유사하게 관절 유전자를 발현하는 것으로 나타났다.반면 슬라이스 절제술은 연골 [73]마커 발현으로 볼 수 있는 골격 요소의 융합으로 인해 관절이 재생되지 않았다.

포유류의 털의 생리적인 재생과 유사하게, 새들은 손상된 깃털을 수리하거나 깃털로 짝을 유혹하기 위해 깃털을 재생시킬 수 있다.전형적으로 번식기와 관련된 계절적 변화는 새들이 깃털을 재생하기 시작하도록 호르몬 신호를 보낼 것이다.이것은 Road Island Red [74]Fowls에서 갑상선 호르몬을 사용하여 실험적으로 유도되었다.

포유동물

가시쥐(Acomys cahirinus 사진)는 피부, 연골, 신경, 근육을 재생시킬 수 있습니다.

포유류는 세포와 생리적 재생이 가능하지만,[1][24] 일반적으로 집단 전체의 회복 재생 능력이 떨어진다.포유류의 생리적인 재생의 예로는 상피 재생(피부 및 장기관), 적혈구 치환, 뿔 재생 및 털 [75][76]순환이 있다.수컷 사슴은 1월부터 4월까지 매년 뿔을 잃고 재생을 통해 생리적 재생의 한 예로서 뿔을 다시 키울 수 있다.사슴뿔은 매년 [77]다시 번식할 수 있는 포유류의 유일한 부속물이다.회복 재생은 포유류에서 드문 현상이지만, 실제로 일어난다.잘 문서화된 예로는 [78]네일베드에 원위하는 디지트 팁의 재생이 있습니다.토끼, 피카, 아프리카 가시쥐에서도 회복 재생이 관찰되고 있다.2012년, 연구원들은 아프리카 가시쥐의 두 종인 Acomys kempi와 Acomys percivali가 자기절제적으로 방출되거나 손상된 조직을 완전히 재생시킬 수 있다는 것을 발견했다.이 종들은 모낭, 피부, 땀샘, 털과 [79]연골을 다시 자라게 할 수 있다.이 두 종 외에, 후속 연구들은 Acomys cahirinus가 귀 핀나의 [80][81]피부와 절제된 조직을 재생시킬 수 있다는 것을 보여주었다.

이러한 예에도 불구하고, 성인 포유류는 대부분의 척추동물 배아/유충, 성인 도롱뇽 및 어류에 [82]비해 재생 능력이 제한적이라는 것이 일반적으로 받아들여지고 있다.하지만 로버트 오의 재생치료 접근법은 전기 자극을 이용한 베커는 [84]쥐와 포유동물에게[83] 전반적으로 유망한 결과를 보여주었다.

일부 연구자들은 또한 MRL 마우스 변종이 향상된 재생 능력을 보인다고 주장해왔다.흉터 없는 치료용 MRL 생쥐와 치료가 잘 되지 않는 C57BL/6 생쥐의 차이 유전자 발현을 비교한 결과, MRL 생쥐와 다른 [85][86]생쥐 사이의 치유 과정을 구별하는 36개의 유전자를 확인했다.이 동물들의 재생 과정에 대한 연구는 p21 [87][88]유전자의 비활성화와 같은 인간에게서 그들을 복제하는 방법을 발견하는 것을 목표로 한다.하지만, 최근의 연구는 MRL 생쥐가 원래 [80]주장대로 재생이 아닌 흉터 조직으로 작은 귓구멍을 실제로 닫는다는 것을 보여주고 있다.

MRL 마우스는 심근경색으로부터 보호되지 않는다; 성체 포유류의 심장 재생은 제한적이다. 심장 근육 세포는 거의 모두 말기적으로 분화되기 때문이다.MRL 마우스는 심장마비 [89]후 일반 마우스와 동일한 양의 심장 부상과 흉터 형성을 보인다.그러나 최근의 연구는 이것이 항상 그렇지는 않을 수 있고 MRL 마우스가 심장 [90]손상 후에 재생될 수 있다는 증거를 제공한다.

인간

인체에서 잃어버린 조직이나 장기의 재생이 연구되고 있다.피부와 같은 어떤 조직들은 매우 쉽게 다시 자라나고; 다른 조직들은 재생 능력이 거의 없거나 전혀 없다고 여겨져 왔지만, 진행 중인 연구는 다양한 조직과 [1][91]장기에 대한 희망이 있다는 것을 암시한다.인간의 장기는 방광, 질, [92]성기를 포함한다.

모든 메타조안이 그렇듯이, 인간은 생리적인 재생을 할 수 있다(즉, 부상을 필요로 하지 않는 항상성 유지 관리 중 세포 교체).예를 들어 적혈구의 적혈구 재생은 골수 내 조혈모세포에서 적혈구의 성숙, 혈류 내 약 90일 동안의 후속 순환, [93]비장 내 최종 세포 사멸을 통해 일어난다.생리학적 재생의 또 다른 예는 여성의 각 생리 주기 동안 순환하는 에스트로겐과 프로게스테론의 [94]다양한 수준에 반응하여 기능적 자궁내막을 제거 및 재구축하는 것이다.

그러나 인간은 부상에 대한 반응으로 발생하는 회복 재생능력에 한계가 있다.인간의 가장 연구된 재생 반응 중 하나는 간 손상 후 [95][96]간의 비대증이다.예를 들어 간장의 원래 질량은 부분 [97]간 절제술 후 제거된 간 양에 정비례하여 재확립되며, 이는 신체로부터의 신호가 원하는 질량에 도달할 때까지 양적 또는 음적으로 정확하게 간 질량을 조절함을 나타낸다.이 반응은 기존의 성숙한 간세포(주로 간세포)의 증식을 통해 간의 기능과 질량이 재생되는 세포 재생(보상성 비대증의 한 형태)으로 간주되지만, 간의 정확한 형태학은 [96]회복되지 않는다.이 과정은 성장인자와 사이토카인 조절 [95]경로에 의해 추진된다.염증과 재생의 정상적인 순서는 암에서 정확하게 기능하지 않는다.특히 세포의 사이토카인 자극은 세포 기능을 변화시키고 면역 반응을 [98]억제하는 유전자의 발현으로 이어진다.

성인의 신경 생성 또한 세포 재생의 한 형태이다.예를 들어,[99] 해마 뉴런 재생은 정상적인 성인 인간에서 뉴런의 연간 회전율 1.75%로 발생합니다.심장근구 재생은 정상적인 성인 [100]인간에서 일어나고 경색과 [101]같은 급성 심장 손상 후 성인에게서 더 높은 비율로 일어나는 것으로 밝혀졌다.경색 후 성인 심근에서도 부상 부위 근구의 1% 안팎에서만 증식이 발견돼 심근의 기능을 회복하기에는 역부족이다.그러나 이는 심근세포의 재생과 결과적으로 심근의 재생을 유도할 수 있음을 의미하기 때문에 재생 의학의 중요한 표적이 될 수 있다.

인간에서 회복 재생의 또 다른 예는 손톱 바닥(특히 어린이)[102][103]에 원위하는 지골 절단 후에 발생하는 손가락 끝 재생과 척추 측만증 치료를 위한 골절제술 후에 발생하는 늑골 재생이다(보통 재생은 부분적이고 최대 [104]1년까지 걸릴 수 있다.

그러나 인간 재생의 또 다른 예는 정관 절제 후에 발생하여 [105]정관 절제 실패의 결과를 초래하는 정관 절제 재생이다.

파충류

파충류의 재생능력과 재생정도는 다양한 종에 따라 다르지만 가장 주목되고 잘 연구된 것은 [106][107][108]도마뱀의 꼬리 재생이다.도마뱀 외에도 악어의 꼬리와 상악골에서 재생이 관찰되고 성체 신경생성도 [106][109][110]관찰되고 있다.꼬리 재생은 [106]에게서 관찰된 적이 없다.도마뱀은 [106][107][108][111]집단으로 가장 높은 재생 능력을 가지고 있다.자기꼬리손실에 이어 새로운 꼬리의 에피모르픽 재생은 기능적, 형태학적으로 [106][107]유사한 구조를 낳는 발진 매개 과정을 통해 진행된다.

콘드리히티예스

평균적인 상어는 일생 동안 약 30,000에서 40,000개의 이빨을 잃는 것으로 추정되어 왔다.레오파드 상어는 9일에서 12일마다 정기적으로 이빨을 교체하는데 이것은 생리적인 재생의 한 예이다.이것은 상어 이빨이 뼈에 붙어있지 않고 뼈 구멍 안에서 [69]발달하기 때문에 발생할 수 있습니다.

로돕신 재생은 스케이트와 레이에서 연구되어 왔다.광탈색 후 로돕신[112]망막에서 2시간 이내에 완전히 재생됩니다.

백상아리는 간의 3분의 2 이상을 재생시킬 수 있으며, 이는 3개의 마이크로 RNA, xtr-miR-125b, fru-miR-204 및 has-miR-142-3p_R-와 연결되어 있다.한 연구에서 간의 3분의 2가 제거되었고 24시간 이내에 간의 절반 이상이 [113]비대로 고생했다.

어떤 상어들은 비늘과 심지어 손상 후에 피부를 재생시킬 수 있다.피부에 상처를 입은 지 2주 이내에 점액이 상처로 분비되어 치유 과정을 시작합니다.한 연구에서는 부상 부위의 대부분이 4개월 이내에 재생되는 것으로 나타났지만 재생 부위는 높은 [114]변동성을 보였다.

「 」를 참조해 주세요.

메모들

  1. ^ a b c d Birbrair A, Zhang T, Wang ZM, Messi ML, Enikolopov GN, Mintz A, Delbono O (August 2013). "Role of pericytes in skeletal muscle regeneration and fat accumulation". Stem Cells and Development. 22 (16): 2298–314. doi:10.1089/scd.2012.0647. PMC 3730538. PMID 23517218.
  2. ^ a b Carlson BM (2007). Principles of Regenerative Biology. Elsevier Inc. p. 400. ISBN 978-0-12-369439-3.
  3. ^ Gabor MH, Hotchkiss RD (March 1979). "Parameters governing bacterial regeneration and genetic recombination after fusion of Bacillus subtilis protoplasts". Journal of Bacteriology. 137 (3): 1346–53. doi:10.1128/JB.137.3.1346-1353.1979. PMC 218319. PMID 108246.
  4. ^ a b Min S, Wang SW, Orr W (2006). "Graphic general pathology: 2.2 complete regeneration". Pathology. pathol.med.stu.edu.cn. Archived from the original on 2012-12-07. Retrieved 2012-12-07. (1) Complete regeneration: The new tissue is the same as the tissue that was lost. After the repair process has been completed, the structure and function of the injured tissue are completely normal
  5. ^ a b Min S, Wang SW, Orr W (2006). "Graphic general pathology: 2.3 Incomplete regeneration". Pathology. pathol.med.stu.edu.cn. Archived from the original on 2013-11-10. Retrieved 2012-12-07. The new tissue is not the same as the tissue that was lost. After the repair process has been completed, there is a loss in the structure or function of the injured tissue. In this type of repair, it is common that granulation tissue (stromal connective tissue) proliferates to fill the defect created by the necrotic cells. The necrotic cells are then replaced by scar tissue.
  6. ^ Himeno Y, Engelman RW, Good RA (June 1992). "Influence of calorie restriction on oncogene expression and DNA synthesis during liver regeneration". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 89 (12): 5497–501. Bibcode:1992PNAS...89.5497H. doi:10.1073/pnas.89.12.5497. PMC 49319. PMID 1608960.
  7. ^ Bryant PJ, Fraser SE (May 1988). "Wound healing, cell communication, and DNA synthesis during imaginal disc regeneration in Drosophila". Developmental Biology. 127 (1): 197–208. doi:10.1016/0012-1606(88)90201-1. PMID 2452103.
  8. ^ a b Brockes JP, Kumar A (2008). "Comparative aspects of animal regeneration". Annual Review of Cell and Developmental Biology. 24: 525–49. doi:10.1146/annurev.cellbio.24.110707.175336. PMID 18598212.
  9. ^ a b Sánchez Alvarado A (June 2000). "Regeneration in the metazoans: why does it happen?" (PDF). BioEssays. 22 (6): 578–90. doi:10.1002/(SICI)1521-1878(200006)22:6<578::AID-BIES11>3.0.CO;2-#. PMID 10842312.
  10. ^ a b Reddien PW, Sánchez Alvarado A (2004). "Fundamentals of planarian regeneration". Annual Review of Cell and Developmental Biology. 20: 725–57. doi:10.1146/annurev.cellbio.20.010403.095114. PMID 15473858. S2CID 1320382.
  11. ^ Campbell NA (1996). Biology (4th ed.). California: The Benjamin Cummings Publishing Company, Inc. p. 1206. ISBN 978-0-8053-1940-8.
  12. ^ Wilkie IC (December 2001). "Autotomy as a prelude to regeneration in echinoderms". Microscopy Research and Technique. 55 (6): 369–96. doi:10.1002/jemt.1185. PMID 11782069. S2CID 20291486.
  13. ^ Maiorana VC (1977). "Tail autotomy, functional conflicts and their resolution by a salamander". Nature. 2265 (5594): 533–535. Bibcode:1977Natur.265..533M. doi:10.1038/265533a0. S2CID 4219251.
  14. ^ Maginnis TL (2006). "The costs of autotomy and regeneration in animals: a review and framework for future research". Behavioral Ecology. 7 (5): 857–872. doi:10.1093/beheco/arl010.
  15. ^ Edmondson, C. H. (1935). "Autotomy and regeneration of Hawaiian starfishes" (PDF). Bishop Museum Occasional Papers. 11 (8): 3–20.
  16. ^ "UCSB Science Line". scienceline.ucsb.edu. Retrieved 2015-11-02.
  17. ^ Dietze MC, Clark JS (2008). "Changing the gap dynamics paradigm: Vegetative regenerative control on forest response to disturbance" (PDF). Ecological Monographs. 78 (3): 331–347. doi:10.1890/07-0271.1.
  18. ^ Bailey J, Covington WW (2002). "Evaluation ponderosa pine regeneration rates following ecological restoration treatments in northern Arizona, USA" (PDF). Forest Ecology and Management. 155 (1–3): 271–278. doi:10.1016/S0378-1127(01)00564-3.
  19. ^ Fu SY, Gordon T (1997). "The cellular and molecular basis of peripheral nerve regeneration". Molecular Neurobiology. 14 (1–2): 67–116. doi:10.1007/BF02740621. PMID 9170101. S2CID 13045638.
  20. ^ Akimenko MA, Johnson SL, Westerfield M, Ekker M (February 1995). "Differential induction of four msx homeobox genes during fin development and regeneration in zebrafish" (PDF). Development. 121 (2): 347–57. doi:10.1242/dev.121.2.347. PMID 7768177.
  21. ^ a b Sánchez Alvarado A, Tsonis PA (November 2006). "Bridging the regeneration gap: genetic insights from diverse animal models" (PDF). Nature Reviews Genetics. 7 (11): 873–84. doi:10.1038/nrg1923. PMID 17047686. S2CID 2978615.
  22. ^ Kumar A, Godwin JW, Gates PB, Garza-Garcia AA, Brockes JP (November 2007). "Molecular basis for the nerve dependence of limb regeneration in an adult vertebrate". Science. 318 (5851): 772–7. Bibcode:2007Sci...318..772K. doi:10.1126/science.1147710. PMC 2696928. PMID 17975060.
  23. ^ a b Skinner DM (1985). "Molting and Regneration". In Bliss DE, Mantel LH (eds.). Integument, Pigments, and Hormonal Processes. Vol. 9. Academic Press. pp. 46–146. ISBN 978-0-323-13922-9.
  24. ^ a b Seifert AW, Monaghan JR, Smith MD, Pasch B, Stier AC, Michonneau F, Maden M (May 2012). "The influence of fundamental traits on mechanisms controlling appendage regeneration". Biological Reviews of the Cambridge Philosophical Society. 87 (2): 330–45. doi:10.1111/j.1469-185X.2011.00199.x. PMID 21929739. S2CID 22877405.
  25. ^ Travis DF (February 1955). "The Molting Cycle of the Spiny Lobster, Panulirus argus Latreille. II. Pre-Ecdysial Histological and Histochemical Changes in the Hepatopancreas and Integumental Tissues". Biological Bulletin. 108 (1): 88–112. doi:10.2307/1538400. JSTOR 1538400.
  26. ^ Mito, Taro; Ishimaru, Yoshiyasu; Watanabe, Takahito; Nakamura, Taro; Ylla, Guillem; Noji, Sumihare; Extavour, Cassandra G. (2022), "Cricket: The third domesticated insect", Current Topics in Developmental Biology, Elsevier, vol. 147, pp. 291–306, doi:10.1016/bs.ctdb.2022.02.003, ISBN 978-0-12-820154-1, retrieved 2022-06-08
  27. ^ a b Fox, Donald T.; Cohen, Erez; Smith-Bolton, Rachel (2020-04-01). "Model systems for regeneration: Drosophila". Development. 147 (7): dev173781. doi:10.1242/dev.173781. ISSN 1477-9129. PMC 7157589. PMID 32253254.
  28. ^ Roche, John P. (September 22, 2020). "Limb Regeneration in Lady Beetles: Product of Selection or Developmental Byproduct?". Entomology Today. Entomological Society of America. Retrieved September 23, 2020.
  29. ^ Das S (November 2015). "Morphological, Molecular, and Hormonal Basis of Limb Regeneration across Pancrustacea". Integrative and Comparative Biology. 55 (5): 869–77. doi:10.1093/icb/icv101. PMID 26296354.
  30. ^ Hamada Y, Bando T, Nakamura T, Ishimaru Y, Mito T, Noji S, Tomioka K, Ohuchi H (September 2015). "Leg regeneration is epigenetically regulated by histone H3K27 methylation in the cricket Gryllus bimaculatus". Development. 142 (17): 2916–27. doi:10.1242/dev.122598. PMID 26253405.
  31. ^ Nisani Z, Dunbar SG, Hayes WK (June 2007). "Cost of venom regeneration in Parabuthus transvaalicus (Arachnida: Buthidae)". Comparative Biochemistry and Physiology. Part A, Molecular & Integrative Physiology. 147 (2): 509–13. doi:10.1016/j.cbpa.2007.01.027. PMID 17344080.
  32. ^ Fox, Donald T.; Cohen, Erez; Smith-Bolton, Rachel (2020-04-01). "Model systems for regeneration: Drosophila". Development. 147 (7): dev173781. doi:10.1242/dev.173781. ISSN 1477-9129. PMC 7157589. PMID 32253254.
  33. ^ Fox, Donald T.; Cohen, Erez; Smith-Bolton, Rachel (2020-04-01). "Model systems for regeneration: Drosophila". Development. 147 (7): dev173781. doi:10.1242/dev.173781. ISSN 1477-9129. PMC 7157589. PMID 32253254.
  34. ^ Moya, Iván M; Halder, Georg (2016-12-01). "The Hippo pathway in cellular reprogramming and regeneration of different organs". Current Opinion in Cell Biology. Differentiation and disease. 43: 62–68. doi:10.1016/j.ceb.2016.08.004. ISSN 0955-0674.
  35. ^ a b Bely AE (August 2006). "Distribution of segment regeneration ability in the Annelida". Integrative and Comparative Biology. 46 (4): 508–18. doi:10.1093/icb/icj051. PMID 21672762.
  36. ^ Hill SD (December 1972). "Caudal regeneration in the absence of a brain in two species of sedentary polychaetes". Journal of Embryology and Experimental Morphology. 28 (3): 667–80. PMID 4655324.
  37. ^ Giani VC, Yamaguchi E, Boyle MJ, Seaver EC (May 2011). "Somatic and germline expression of piwi during development and regeneration in the marine polychaete annelid Capitella teleta". EvoDevo. 2: 10. doi:10.1186/2041-9139-2-10. PMC 3113731. PMID 21545709.
  38. ^ a b c d e f Zoran MJ (2001). "Regeneration in Annelids". Encyclopedia of Life Sciences. John Wiley & Sons, Ltd. doi:10.1002/9780470015902.a0022103. ISBN 978-0-470-01590-2.
  39. ^ Bely AE (October 2014). "Early events in annelid regeneration: a cellular perspective". Integrative and Comparative Biology. 54 (4): 688–99. doi:10.1093/icb/icu109. PMID 25122930.
  40. ^ Candia Carnevali MD, Bonasoro F, Patruno M, Thorndyke MC (October 1998). "Cellular and molecular mechanisms of arm regeneration in crinoid echinoderms: the potential of arm explants". Development Genes and Evolution. 208 (8): 421–30. doi:10.1007/s004270050199. PMID 9799422. S2CID 23560812.
  41. ^ San Miguel-Ruiz JE, Maldonado-Soto AR, García-Arrarás JE (January 2009). "Regeneration of the radial nerve cord in the sea cucumber Holothuria glaberrima". BMC Developmental Biology. 9: 3. doi:10.1186/1471-213X-9-3. PMC 2640377. PMID 19126208.
  42. ^ Patruno M, Thorndyke MC, Candia Carnevali MD, Bonasoro F, Beesley PW (March 2001). "Growth factors, heat-shock proteins and regeneration in echinoderms". The Journal of Experimental Biology. 204 (Pt 5): 843–8. doi:10.1242/jeb.204.5.843. PMID 11171408.
  43. ^ a b c Morgan TH (1900). "Regeneration in Planarians". Archiv für Entwicklungsmechanik der Organismen. 10 (1): 58–119. doi:10.1007/BF02156347. hdl:2027/hvd.32044107333064. S2CID 33712732.
  44. ^ García-Arrarás JE, Greenberg MJ (December 2001). "Visceral regeneration in holothurians". Microscopy Research and Technique. 55 (6): 438–51. doi:10.1002/jemt.1189. PMID 11782073. S2CID 11533400.
  45. ^ Sánchez Alvarado A, Newmark PA (1998). "The use of planarians to dissect the molecular basis of metazoan regeneration". Wound Repair and Regeneration. 6 (4): 413–20. doi:10.1046/j.1524-475x.1998.60418.x. PMID 9824561. S2CID 8085897.
  46. ^ a b Montgomery JR, Coward SJ (July 1974). "On the minimal size of a planarian capable of regeneration". Transactions of the American Microscopical Society. 93 (3): 386–91. doi:10.2307/3225439. JSTOR 3225439. PMID 4853459.
  47. ^ Elliott SA, Sánchez Alvarado A (2012). "The history and enduring contributions of planarians to the study of animal regeneration". Wiley Interdisciplinary Reviews: Developmental Biology. 2 (3): 301–26. doi:10.1002/wdev.82. PMC 3694279. PMID 23799578.
  48. ^ Wagner DE, Wang IE, Reddien PW (May 2011). "Clonogenic neoblasts are pluripotent adult stem cells that underlie planarian regeneration". Science. 332 (6031): 811–6. Bibcode:2011Sci...332..811W. doi:10.1126/science.1203983. PMC 3338249. PMID 21566185.
  49. ^ a b Holland, Nicholas (2021), "Vicenzo Colucci's 1886 memoir, Intorno alla rigenerazione degli arti e della coda nei tritoni, annotated and translated into English as: Concerning regeneration of the limbs and tail in salamanders", The European Zoological Journal, 88: 837–890, doi:10.1080/24750263.2021.1943549
  50. ^ a b Brockes JP, Kumar A, Velloso CP (2001). "Regeneration as an evolutionary variable". Journal of Anatomy. 199 (Pt 1–2): 3–11. doi:10.1046/j.1469-7580.2001.19910003.x. PMC 1594962. PMID 11523827.
  51. ^ Brockes JP, Kumar A (August 2002). "Plasticity and reprogramming of differentiated cells in amphibian regeneration". Nature Reviews Molecular Cell Biology. 3 (8): 566–74. doi:10.1038/nrm881. PMID 12154368. S2CID 21409289.
  52. ^ Iten LE, Bryant SV (December 1973). "Forelimb regeneration from different levels of amputation in the newt, Notophthalmus viridescens: Length, rate, and stages". Wilhelm Roux' Archiv für Entwicklungsmechanik der Organismen. 173 (4): 263–282. doi:10.1007/BF00575834. PMID 28304797. S2CID 3946430.
  53. ^ a b Endo T, Bryant SV, Gardiner DM (June 2004). "A stepwise model system for limb regeneration" (PDF). Developmental Biology. 270 (1): 135–45. doi:10.1016/j.ydbio.2004.02.016. PMID 15136146.
  54. ^ Satoh A, Bryant SV, Gardiner DM (June 2012). "Nerve signaling regulates basal keratinocyte proliferation in the blastema apical epithelial cap in the axolotl (Ambystoma mexicanum)". Developmental Biology. 366 (2): 374–81. doi:10.1016/j.ydbio.2012.03.022. PMID 22537500.
  55. ^ Christensen RN, Tassava RA (February 2000). "Apical epithelial cap morphology and fibronectin gene expression in regenerating axolotl limbs". Developmental Dynamics. 217 (2): 216–24. doi:10.1002/(sici)1097-0177(200002)217:2<216::aid-dvdy8>3.0.co;2-8. PMID 10706145.
  56. ^ a b Bryant SV, Endo T, Gardiner DM (2002). "Vertebrate limb regeneration and the origin of limb stem cells". The International Journal of Developmental Biology. 46 (7): 887–96. PMID 12455626.
  57. ^ Mullen LM, Bryant SV, Torok MA, Blumberg B, Gardiner DM (November 1996). "Nerve dependency of regeneration: the role of Distal-less and FGF signaling in amphibian limb regeneration". Development. 122 (11): 3487–97. doi:10.1242/dev.122.11.3487. PMID 8951064.
  58. ^ Souppouris, Aaron (May 23, 2013). "Scientists identify cell that could hold the secret to limb regeneration". The Verge. Macrophages are a type of repairing cell that devour dead cells and pathogens, and trigger other immune cells to respond to pathogens.
  59. ^ Godwin JW, Pinto AR, Rosenthal NA (June 2013). "Macrophages are required for adult salamander limb regeneration". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (23): 9415–20. Bibcode:2013PNAS..110.9415G. doi:10.1073/pnas.1300290110. PMC 3677454. PMID 23690624.
  60. ^ Voss SR, Muzinic L, Zimmerman G (2018). "Sal-Site". Ambystoma.org.
  61. ^ a b Liversage RA, Anderson M, Korneluk RG (February 2005). "Regenerative response of amputated forelimbs of Xenopus laevis froglets to partial denervation". Journal of Morphology. 191 (2): 131–144. doi:10.1002/jmor.1051910204. PMID 29921109. S2CID 49315283.
  62. ^ a b Reya T, Clevers H (April 2005). "Wnt signalling in stem cells and cancer". Nature. 434 (7035): 843–50. Bibcode:2005Natur.434..843R. doi:10.1038/nature03319. PMID 15829953. S2CID 3645313.
  63. ^ Murugan, Nirosha J.; Vigran, Hannah J.; Miller, Kelsie A.; Golding, Annie; Pham, Quang L.; Sperry, Megan M.; Rasmussen-Ivey, Cody; Kane, Anna W.; Kaplan, David L.; Levin, Michael (28 January 2022). "Acute multidrug delivery via a wearable bioreactor facilitates long-term limb regeneration and functional recovery in adult Xenopus laevis". Science Advances. 8 (4): eabj2164. doi:10.1126/sciadv.abj2164.
  64. ^ a b c d e Bosch TC (March 2007). "Why polyps regenerate and we don't: towards a cellular and molecular framework for Hydra regeneration". Developmental Biology. 303 (2): 421–33. doi:10.1016/j.ydbio.2006.12.012. PMID 17234176.
  65. ^ a b c d Wenger Y, Buzgariu W, Reiter S, Galliot B (August 2014). "Injury-induced immune responses in Hydra". Seminars in Immunology. 26 (4): 277–94. doi:10.1016/j.smim.2014.06.004. PMID 25086685.
  66. ^ Buzgariu W, Crescenzi M, Galliot B (2014). Science Direct. "Robust G2 pausing of adult stem cells in Hydra". Differentiation; Research in Biological Diversity. 87 (1–2): 83–99. doi:10.1016/j.diff.2014.03.001. PMID 24703763.
  67. ^ Morgan TH (1901). Regeneration. Columbia University Biological Series. Vol. 7. New York: The MacMillan Company.
  68. ^ Agata K, Saito Y, Nakajima E (February 2007). "Unifying principles of regeneration I: Epimorphosis versus morphallaxis". Development, Growth & Differentiation. 49 (2): 73–8. doi:10.1111/j.1440-169X.2007.00919.x. PMID 17335428. S2CID 29433846.
  69. ^ a b c Vorontsova MA, Liosner LD (1960). Billet F (ed.). Asexual Reproduction and Regeneration. Translated by Allen PM. London: Pergamon Press. pp. 367–371.
  70. ^ Sidorova VF (July 1962). "Liver regeneration in birds". Biulleten' Eksperimental'noi Biologii I Meditsiny. 52 (6): 1426–9. doi:10.1007/BF00785312. PMID 14039265. S2CID 39410595.
  71. ^ Cotanche DA, Lee KH, Stone JS, Picard DA (January 1994). "Hair cell regeneration in the bird cochlea following noise damage or ototoxic drug damage". Anatomy and Embryology. 189 (1): 1–18. doi:10.1007/BF00193125. PMID 8192233. S2CID 25619337.
  72. ^ Coleman CM (September 2008). "Chicken embryo as a model for regenerative medicine". Birth Defects Research. Part C, Embryo Today. 84 (3): 245–56. doi:10.1002/bdrc.20133. PMID 18773459.
  73. ^ Özpolat BD, Zapata M, Daniel Frugé J, Coote J, Lee J, Muneoka K, Anderson R (December 2012). "Regeneration of the elbow joint in the developing chick embryo recapitulates development". Developmental Biology. 372 (2): 229–38. doi:10.1016/j.ydbio.2012.09.020. PMC 3501998. PMID 23036343.
  74. ^ Hosker A (1936). "Regeneration of Feathers after Thyroid Feeding". Journal of Experimental Biology. 13 (3): 344–351. doi:10.1242/jeb.13.3.344.
  75. ^ Kresie L (April 2001). "Artificial blood: an update on current red cell and platelet substitutes". Proceedings. 14 (2): 158–61. doi:10.1080/08998280.2001.11927754. PMC 1291332. PMID 16369608.
  76. ^ Li C, Pearson A, McMahon C (2013). "Morphogenetic mechanisms in the cyclic regeneration of hair follicles and deer antlers from stem cells". BioMed Research International. 2013: 643601. doi:10.1155/2013/643601. PMC 3870647. PMID 24383056.
  77. ^ Price J, Allen S (May 2004). "Exploring the mechanisms regulating regeneration of deer antlers". Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 359 (1445): 809–22. doi:10.1098/rstb.2004.1471. PMC 1693364. PMID 15293809.
  78. ^ Fernando WA, Leininger E, Simkin J, Li N, Malcom CA, Sathyamoorthi S, Han M, Muneoka K (February 2011). "Wound healing and blastema formation in regenerating digit tips of adult mice". Developmental Biology. 350 (2): 301–10. doi:10.1016/j.ydbio.2010.11.035. PMC 3031655. PMID 21145316.
  79. ^ Seifert AW, Kiama SG, Seifert MG, Goheen JR, Palmer TM, Maden M (September 2012). "Skin shedding and tissue regeneration in African spiny mice (Acomys)". Nature. 489 (7417): 561–5. Bibcode:2012Natur.489..561S. doi:10.1038/nature11499. PMC 3480082. PMID 23018966.
  80. ^ a b Gawriluk TR, Simkin J, Thompson KL, Biswas SK, Clare-Salzler Z, Kimani JM, Kiama SG, Smith JJ, Ezenwa VO, Seifert AW (April 2016). "Comparative analysis of ear-hole closure identifies epimorphic regeneration as a discrete trait in mammals". Nature Communications. 7: 11164. Bibcode:2016NatCo...711164G. doi:10.1038/ncomms11164. PMC 4848467. PMID 27109826.
  81. ^ Matias Santos D, Rita AM, Casanellas I, Brito Ova A, Araújo IM, Power D, Tiscornia G (February 2016). "Ear wound regeneration in the African spiny mouse Acomys cahirinus". Regeneration. 3 (1): 52–61. doi:10.1002/reg2.50. PMC 4857749. PMID 27499879.
  82. ^ Xu K (July 2013). "Humans' Ability To Regenerate Damaged Organs Is At Our Fingertips". Business Insider.
  83. ^ Becker RO (January 1972). "Stimulation of partial limb regeneration in rats". Nature. 235 (5333): 109–11. Bibcode:1972Natur.235..109B. doi:10.1038/235109a0. PMID 4550399. S2CID 4209650.
  84. ^ Becker RO, Spadaro JA (May 1972). "Electrical stimulation of partial limb regeneration in mammals". Bulletin of the New York Academy of Medicine. 48 (4): 627–41. PMC 1806700. PMID 4503923.
  85. ^ Masinde G, Li X, Baylink DJ, Nguyen B, Mohan S (April 2005). "Isolation of wound healing/regeneration genes using restrictive fragment differential display-PCR in MRL/MPJ and C57BL/6 mice". Biochemical and Biophysical Research Communications. 330 (1): 117–22. doi:10.1016/j.bbrc.2005.02.143. PMID 15781240.
  86. ^ Hayashi ML, Rao BS, Seo JS, Choi HS, Dolan BM, Choi SY, Chattarji S, Tonegawa S (July 2007). "Inhibition of p21-activated kinase rescues symptoms of fragile X syndrome in mice". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (27): 11489–94. Bibcode:2007PNAS..10411489H. doi:10.1073/pnas.0705003104. PMC 1899186. PMID 17592139.
  87. ^ Bedelbaeva K, Snyder A, Gourevitch D, Clark L, Zhang XM, Leferovich J, Cheverud JM, Lieberman P, Heber-Katz E (March 2010). "Lack of p21 expression links cell cycle control and appendage regeneration in mice". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (13): 5845–50. Bibcode:2010PNAS..107.5845B. doi:10.1073/pnas.1000830107. PMC 2851923. PMID 20231440.
  88. ^ 인간은 하나의 유전자를 제거함으로써 새처럼 조직을 재생시킬 수 있다.
  89. ^ Abdullah I, Lepore JJ, Epstein JA, Parmacek MS, Gruber PJ (March–April 2005). "MRL mice fail to heal the heart in response to ischemia-reperfusion injury". Wound Repair and Regeneration. 13 (2): 205–8. doi:10.1111/j.1067-1927.2005.130212.x. PMID 15828946. S2CID 7360046.
  90. ^ "Regeneration in the mammalian heart demonstrated by Wistar researchers EurekAlert! Science News". Eurekalert.org. Retrieved 2019-03-16.
  91. ^ Min S, Wang SW, Orr W (2006). "Graphic general pathology: 2.2 complete regeneration". Pathology. pathol.med.stu.edu.cn. Archived from the original on 2012-12-07. Retrieved 2013-11-10. After the repair process has been completed, the structure and function of the injured tissue are completely normal. This type of regeneration is common in physiological situations. Examples of physiological regeneration are the continual replacement of cells of the skin and repair of the endometrium after menstruation. Complete regeneration can occur in pathological situations in tissues that have good regenerative capacity.
  92. ^ Mohammadi D (4 October 2014). "Bioengineered organs: The story so far…". The Guardian. Retrieved 9 March 2015.
  93. ^ Carlson BM (2007). Principles of Regenerative Biology. Academic Press. pp. 25–26. ISBN 978-0-12-369439-3.
  94. ^ Ferenczy A, Bertrand G, Gelfand MM (April 1979). "Proliferation kinetics of human endometrium during the normal menstrual cycle". American Journal of Obstetrics and Gynecology. 133 (8): 859–67. doi:10.1016/0002-9378(79)90302-8. PMID 434029.
  95. ^ a b Michalopoulos GK, DeFrances MC (April 1997). "Liver regeneration". Science. 276 (5309): 60–6. doi:10.1126/science.276.5309.60. PMID 9082986. S2CID 2756510.
  96. ^ a b Taub R (October 2004). "Liver regeneration: from myth to mechanism". Nature Reviews Molecular Cell Biology. 5 (10): 836–47. doi:10.1038/nrm1489. PMID 15459664. S2CID 30647609.
  97. ^ Kawasaki S, Makuuchi M, Ishizone S, Matsunami H, Terada M, Kawarazaki H (March 1992). "Liver regeneration in recipients and donors after transplantation". Lancet. 339 (8793): 580–1. doi:10.1016/0140-6736(92)90867-3. PMID 1347095. S2CID 34148354.
  98. ^ Vlahopoulos SA (August 2017). "Aberrant control of NF-κB in cancer permits transcriptional and phenotypic plasticity, to curtail dependence on host tissue: molecular mode". Cancer Biology & Medicine. 14 (3): 254–270. doi:10.20892/j.issn.2095-3941.2017.0029. PMC 5570602. PMID 28884042.
  99. ^ Spalding KL, Bergmann O, Alkass K, Bernard S, Salehpour M, Huttner HB, Boström E, Westerlund I, Vial C, Buchholz BA, Possnert G, Mash DC, Druid H, Frisén J (June 2013). "Dynamics of hippocampal neurogenesis in adult humans". Cell. 153 (6): 1219–1227. doi:10.1016/j.cell.2013.05.002. PMC 4394608. PMID 23746839.
  100. ^ Bergmann O, Bhardwaj RD, Bernard S, Zdunek S, Barnabé-Heider F, Walsh S, Zupicich J, Alkass K, Buchholz BA, Druid H, Jovinge S, Frisén J (April 2009). "Evidence for cardiomyocyte renewal in humans". Science. 324 (5923): 98–102. Bibcode:2009Sci...324...98B. doi:10.1126/science.1164680. PMC 2991140. PMID 19342590.
  101. ^ Beltrami AP, Urbanek K, Kajstura J, Yan SM, Finato N, Bussani R, Nadal-Ginard B, Silvestri F, Leri A, Beltrami CA, Anversa P (June 2001). "Evidence that human cardiac myocytes divide after myocardial infarction". The New England Journal of Medicine. 344 (23): 1750–7. doi:10.1056/NEJM200106073442303. PMID 11396441.
  102. ^ McKim LH (May 1932). "Regeneration of the distal phalanx". Canadian Medical Association Journal. 26 (5): 549–50. PMC 402335. PMID 20318716.
  103. ^ Muneoka K, Allan CH, Yang X, Lee J, Han M (December 2008). "Mammalian regeneration and regenerative medicine". Birth Defects Research. Part C, Embryo Today. 84 (4): 265–80. doi:10.1002/bdrc.20137. PMID 19067422.
  104. ^ Philip SJ, Kumar RJ, Menon KV (October 2005). "Morphological study of rib regeneration following costectomy in adolescent idiopathic scoliosis". European Spine Journal. 14 (8): 772–6. doi:10.1007/s00586-005-0949-8. PMC 3489251. PMID 16047208.
  105. ^ Korin Miller (September 11, 2017). "Here's What Happens When a Vasectomy Fails". SELF. Retrieved 2019-03-16.
  106. ^ a b c d e Alibardi L (2010). "Regeneration in Reptiles and Its Position Among Vertebrates". Morphological and Cellular Aspects of Tail and Limb Regeneration in Lizards a Model System with Implications for Tissue Regeneration in Mammals. Advances in Anatomy, Embryology, and Cell Biology. Vol. 207. Heidelberg: Springer. pp. iii, v–x, 1–109. doi:10.1007/978-3-642-03733-7_1. ISBN 978-3-642-03732-0. PMID 20334040.
  107. ^ a b c McLean KE, Vickaryous MK (August 2011). "A novel amniote model of epimorphic regeneration: the leopard gecko, Eublepharis macularius". BMC Developmental Biology. 11 (1): 50. doi:10.1186/1471-213x-11-50. PMC 3180301. PMID 21846350.
  108. ^ a b Bellairs A, Bryant S (1985). "Autonomy and Regeneration in Reptiles". In Gans C, Billet F (eds.). Biology of the Reptilia. Vol. 15. New York: John Wiley and Sons. pp. 301–410.
  109. ^ Brazaitis P (July 31, 1981). "Maxillary Regeneration in a Marsh Crocodile, Crocodylus palustris". Journal of Herpetology. 15 (3): 360–362. doi:10.2307/1563441. JSTOR 1563441.
  110. ^ Font E, Desfilis E, Pérez-Cañellas MM, García-Verdugo JM (2001). "Neurogenesis and neuronal regeneration in the adult reptilian brain". Brain, Behavior and Evolution. 58 (5): 276–95. doi:10.1159/000057570. PMID 11978946. S2CID 1079753.
  111. ^ Vickaryous M (2014). "Vickaryous Lab: Regeneration - Evolution - Development". Department of Biomedical Sciences, University of Guelph.
  112. ^ Sun Y, Ripps H (November 1992). "Rhodopsin regeneration in the normal and in the detached/replaced retina of the skate". Experimental Eye Research. 55 (5): 679–89. doi:10.1016/0014-4835(92)90173-p. PMID 1478278.
  113. ^ Lu C, Zhang J, Nie Z, Chen J, Zhang W, Ren X, Yu W, Liu L, Jiang C, Zhang Y, Guo J, Wu W, Shu J, Lv Z (2013). "Study of microRNAs related to the liver regeneration of the whitespotted bamboo shark, Chiloscyllium plagiosum". BioMed Research International. 2013: 795676. doi:10.1155/2013/795676. PMC 3789328. PMID 24151623.
  114. ^ Reif W (June 1978). "Wound Healing in Sharks". Zoomorphology. 90 (2): 101–111. doi:10.1007/bf02568678. S2CID 29300907.

원천

추가 정보

  • 케빈 스트레인지와 비라부스 인, "재생의 기회:한때 버려진 약물 화합물은 질병과 부상으로 손상된 장기를 재건할 수 있는 능력을 보여준다.", Scientific American, vol. 320, no. 4(2019년 4월), 페이지 56-61.

[1]

외부 링크

  1. ^ Holland, Nicholas (2021), "Vicenzo Colucci's 1886 memoir, Intorno alla rigenerazione degli arti e della coda nei tritoni, annotated and translated into English as: Concerning regeneration of the limbs and tail in salamanders", The European Zoological Journal, 88: 837–890