액티브 트랜스포트

Active transport
이 기사는 세포 생물학에서의 운송에 관한 것이다.인간 교통 시스템은 활성 교통 수단을 참조하십시오.

세포생물학에서 활성수송은 농도가 낮은 영역에서 농도가 높은 영역으로 세포막을 가로질러 분자가 이동하는 것이다.능동적 이송은 이 움직임을 달성하기 위해 셀 에너지를 필요로 합니다.활성수송에는 아데노신3인산(ATP)을 사용하는 1차 활성수송과 전기화학적 구배를 사용하는 2차 활성수송의 두 가지 유형이 있습니다.

액티브 트랜스포트의 예는 다음과 같습니다.

  • 대식세포에 의한 세균의 식세포증
  • 심근 세포에서 칼슘 이온의 이동
  • 인체 내장의 내장 내벽을 통한 아미노산 운반
  • 다양한 세포에서 효소, 펩타이드 호르몬, 항체 등의 단백질 분비
  • 공격하는 질병을 방어하기 위한 백혈구 기능

액티브 셀룰러 트랜스포트(ACT)

경사로 아래로 이동하는 분자의 운동 에너지와 자연적인 엔트로피를 사용하는 수동적 운송과 달리, 능동적 운송은 세포 에너지를 사용하여 경사로, 극의 반발 또는 다른 저항으로 그들을 이동시킨다.활성 수송은 보통 이온, 포도당, 아미노산과 같이 세포가 필요로 하는 고농도의 분자의 축적과 관련이 있습니다.활성 수송의 예로는 사람의 장에서 포도당을 흡수하는 것과 식물의 [1]뿌리털 세포로 미네랄 이온을 흡수하는 것이 있다.활성 수송은 저농도 영역에서 고농도 영역으로 세포막을 가로질러 분자가 이동하는 것이다.능동 이송을 위해서는 셀 에너지가 필요합니다.

역사

1848년, 독일의 생리학자 에밀 뒤 부이스-레이몽은 [2]막들을 통해 활발하게 물질을 운반할 수 있는 가능성을 제안했다.

Rosenberg(1948)는 에너지적 [3]고려사항에 기초하여 능동적 운송의 개념을 공식화했지만, 나중에 다시 정의될 것이다.

1997년 덴마크 의사인[4] Jens Christian Skou는 나트륨 칼륨 [4]펌프에 대한 연구로 노벨 화학상을 받았다.

당뇨병[5] 치료와 관련된 연구에서 특히 두드러지는 공수송체의 한 범주는 나트륨-글루코스 공수송체이다.이 수송기들은 국립 보건원의 [6]과학자들에 의해 발견되었다.이 과학자들은 쥐의 신장세관에 있는 다른 지점들에서 포도당의 흡수에 차이가 있다는 것을 알아챘다.그 후 이 유전자는 장내 포도당 수송 단백질에 대해 발견되었고 이러한 막 나트륨 포도당 공수송 시스템과 연결되었다.이러한 막수송 단백질 중 첫 번째 단백질은 SGLT1로 명명되었고, 그 후 SGLT2가 [6]발견되었다.로버트 크레인 또한 이 분야에서 중요한 역할을 했다.

배경

특수한 막 통과 단백질은 물질을 인식하고, 그렇지 않을 때 막의 인지질 이중층이 이동하는 물질에 대해 투과성이 없거나 물질이 농도 [7]구배 방향으로 이동하기 때문에 막을 가로질러 이동할 수 있도록 한다.액티브 트랜스포트에는 프라이머리 액티브 트랜스포트 및 세컨더리 액티브 트랜스포트 두 가지 형태가 있습니다.일차 활성 수송에서, 관련된 단백질은 보통 ATP의 형태로 화학 에너지를 사용하는 펌프입니다.그러나 2차 활성 전송은 일반적으로 전기화학적 구배를 이용하여 얻어지는 위치 에너지를 사용한다.전기화학적 구배를 따라 이동하는 이온에서 생성된 에너지는 전기화학적 [8]구배를 거슬러 이동하는 다른 이온의 수송에 전력을 공급하는데 사용됩니다.이것은 세포막을 가로질러 채널을 형성하는 모공 형성 단백질을 포함합니다.수동수송과 능동수송의 차이점은 능동수송은 에너지를 필요로 하고 각각의 농도구배에서 물질을 이동시키는 반면 수동수송은 세포에너지를 필요로 하지 않고 각각의 농도구배 [9]방향으로 물질을 이동시킨다는 것이다.

한쪽 기판이 막을 가로질러 한 방향으로 반송되고 다른 한쪽 기판이 반대 방향으로 공수송된다.심포터에서는 2개의 기판이 막에 걸쳐 같은 방향으로 반송된다.항포트 및 심포트 프로세스는 2차 활성 수송과 관련되어 있습니다. 즉, 두 물질 중 하나가 농도 구배에서 다른 이온(대부분+ Na, K+ 또는+ H 이온)을 농도 구배 아래로 운반하여 얻은 에너지를 이용하여 운반되는 것을 의미합니다.

기질 분자가 저농도 영역에서 고농도[10] 영역으로 이동하는 경우(즉, 농도 구배와 반대 방향 또는 반대 방향)에는 특정 막 통과 캐리어 단백질이 필요하다.이 단백질들은 특정 분자(예: 포도당)에 결합하고 세포막을 가로질러 운반하는 수용체를 가지고 있습니다.이 과정에서 에너지가 필요하기 때문에, 그것은 '능동적' 운송으로 알려져 있다.활성 수송의 예로는 나트륨-칼륨 펌프에 의한 나트륨과 칼륨의 세포로의 운반이 있습니다.활발한 수송은 종종 소장의 내벽에서 일어난다.

식물은 토양이나 다른 소스로부터 미네랄 염을 흡수해야 하지만, 이러한 염은 매우 희박한 용액에 존재한다.활성 수송은 이러한 세포들이 농도 구배 방향에 반하여 희석된 용액에서 소금을 흡수할 수 있게 합니다.예를 들어 염화물(Cl−)과 질산염(NO3−) 이온은 식물세포의 세포에 존재하기 때문에 액포 안으로 운반할 필요가 있다.액포에는 이러한 이온에 대한 채널이 있지만, 이러한 이온의 수송은 농도 구배에 반하므로, 이러한 이온의 이동은 수소 펌프 또는 [8]양성자 펌프에 의해 추진됩니다.

프라이머리 액티브 전송

나트륨-칼륨 펌프의 작용은 1차 활성 수송의 한 예입니다.

직접 활성 수송이라고도 불리는 일차 활성 수송은 막 [11]너머로 분자를 운반하기 위해 대사 에너지를 직접적으로 사용합니다.1차 활성 수송에 의해 세포막을 가로질러 운반되는 물질에는 Na, K+, Mg2+ 및2+ Ca와 같은+ 금속 이온이 포함됩니다.이러한 하전 입자는 이온 펌프나 이온 채널을 사용하여 막을 통과하고 체내에 분포해야 합니다.

이런 종류의 운반을 수행하는 대부분의 효소는 막 통과 ATPase이다.모든 동물에게 보편적인 1차 ATP 효소는 세포 전위를 유지하는 데 도움을 주는 나트륨 칼륨 펌프입니다.나트륨-칼륨 펌프는 세포 안으로 2개의+ K 이온이 이동할[12] 때마다 3개의+ Na 이온을 세포 밖으로 이동시킴으로써 막 전위를 유지합니다.1차 활성 수송을 위한 다른 에너지원으로 산화환원 에너지와 광자 에너지(빛)가 있다.산화환원 에너지를 사용하는 1차 활성 전달의 예는 NADH의 환원 에너지를 사용하여 농도 구배에 반하여 내부 미토콘드리아 막을 가로질러 양성자를 이동하는 미토콘드리아 전자 전달 사슬이다.광에너지를 이용한 1차 활성수송의 예로는 광합성에 관여하는 단백질이 있는데, 광합성은 광자의 에너지를 사용하여 틸라코이드 막을 가로지르는 양성자 구배를 만들고 NADPH의 형태로 환원력을 생성한다.

능동 수송 모델

ATP 가수분해는 전기화학적 구배(낮은 수소 이온 농도부터 높은 수소 이온 농도까지)에 반하여 수소 이온을 운반하는 데 사용됩니다.운반체 단백질의 인산화와 수소 이온의 결합은 수소 이온이 전기 화학적 구배에 반하여 운반되도록 하는 형태적 변화를 유발합니다.결합된 인산기의 가수분해와 수소 이온의 방출은 운반체를 원래의 [13]형태로 회복시킨다.

프라이머리 액티브 트랜스포터의 종류

  1. P형 ATP분해효소 : 나트륨칼륨펌프, 칼슘펌프, 양성자펌프
  2. F-ATPase: 미토콘드리아 ATP 합성효소, 엽록체 ATP 합성효소
  3. V-ATPase: 액포아세타아제
  4. ABC(ATP 바인딩 카세트) 트랜스포터: MDR, CFTR 등

아데노신 삼인산 결합 카세트 운반체(ABC 운반체)는 크고 다양한 단백질군을 구성하며, 종종 ATP 구동 펌프 역할을 한다.일반적으로, ATP 결합 모티브를 구성하는 두 개의 뉴클레오티드 결합 도메인과 "포어" 성분을 생성하는 두 개의 소수성 막 통과 도메인을 포함하여 전체 전달 단백질의 구조에 관련된 여러 도메인이 있다.넓은 관점에서, ABC 전달체는 세포막을 통한 분자의 수입 또는 수출에 관여한다. 그러나 단백질 패밀리 내에는 [14]광범위한 기능이 있다.

식물에서, ABC 전달체는 종종 세포와 세포 세포막, 미토콘드리아, 엽록체, 그리고 혈장막과 같은 세포막 안에서 발견됩니다.식물 ABC 수송체가 병원체 반응, 피토호르몬 수송, [14]해독에 직접적인 역할을 한다는 것을 뒷받침하는 증거가 있다.또한 특정 식물 ABC 트랜스포터는 휘발성[15] 화합물 및 항균 대사물을 [16]활발하게 수출하는 기능을 할 수 있다.

ABC 트랜스포터 PhABCG1이 휘발성 유기화합물의 활성수송에 관여하는 페투니아 플라워(Petunia Hybrida).PhABCG1은 열린 꽃잎에서 발현된다.일반적으로 휘발성 화합물은 종자 확산 유기체와 꽃가루 매개자의 흡인을 촉진할 수 있을 뿐만 아니라 방어, 신호 전달, 대립 유전병증 및 보호에 도움을 줄 수 있다.단백질 PhABCG1을 연구하기 위해 PhABCG1 발현 수준이 감소된 트랜스제닉 페튜니아 RNA 간섭 라인을 생성하였다.이러한 트랜스제닉 라인에서는 휘발성 화합물 방출 감소가 관찰되었다.따라서 PhABCG1은 휘발성 화합물의 수출에 관여할 가능성이 높다.후속 실험에서는 서로 다른 기질을 포함하는 수송 활성을 테스트하기 위해 PhABCG1을 발현하는 배양 제어 및 트랜스제닉 라인을 포함했다.궁극적으로 PhABCG1은 혈장막을 [15]통해 베네질 알코올 및 메틸벤조산염과 같은 휘발성 유기화합물의 단백질 매개 운반을 담당한다.

또한 식물에서 ABC 트랜스포터는 세포 대사물의 수송에 관여할 수 있다.다방성 약물 내성 ABC 운반체는 스트레스 반응과 수출 항균 대사물에 관여하는 것으로 가정된다.이러한 유형의 ABC 트랜스포터의 예로는 단백질 NtPDR1이 있습니다.이 독특한 ABC 트랜스포터는 니코티아나 타바쿰 BY2 세포에서 발견되며 미생물 유도체의 존재 하에서 발현된다.NtPDR1은 식물의 뿌리 표피 및 공중 트리콤에 국재되어 있다.특히 NtPDR1을 대상으로 한 항체를 사용한 실험과 웨스턴 블롯은 이러한 국소화 결정을 가능하게 했다.또한 단백질 NtPDR1은 세포에 [16]고농도로 독성이 있는 항균성 디테르펜 분자를 활발하게 운반할 가능성이 있다.

세컨더리 액티브 트랜스포트

세컨더리 액티브 트랜스포트

공수송 또는 결합수송으로도 알려진 2차 활성수송에서 에너지는 막을 가로질러 분자를 운반하는데 사용된다. 그러나 1차 활성수송과 달리, ATP의 직접적인 결합은 없다.대신 세포 [17]내/외부에서 이온을 펌핑하여 발생하는 전기화학적 전위차에 의존합니다.하나의 이온 또는 분자가 전기화학적 구배를 내려갈 수 있도록 허용하지만, 농도가 낮은 곳에 더 집중되는 농도 구배에 반하여 엔트로피를 증가시키고 신진대사를 위한 에너지원으로서의 역할을 할 수 있다(예: ATP 합성효소).세포막을 가로지르는 양성자의 펌프에서 파생된 에너지는 2차 활성 수송의 에너지원으로 자주 사용됩니다.인간에서 나트륨+(Na)은 일반적으로 혈장막을 가로질러 공수송되는 이온으로, 전기화학적 구배를 사용하여 두 번째 이온 또는 분자의 활성 수송을 그 [18]구배에 대해 작동시킵니다.박테리아와 작은 효모 세포에서 흔히 공수송되는 이온은 [18]수소이다.수소 펌프는 또한 세포의 [19]미토콘드리아에서 일어나는 세포 호흡의 중요한 기능인 전자 전달 사슬과 같은 세포 내에서 과정을 수행하기 위해 전기 화학적 구배를 만드는 데 사용됩니다.

1960년 8월 프라하에서 로버트 K. 크레인은 장내 포도당 [20]흡수를 위한 메커니즘으로 나트륨-포도당 공수송의 발견을 처음으로 제시했다.크레인 공동수송의 발견은 생물학에서 [21][22]플럭스 커플링에 대한 사상 최초의 제안이었다.

공수송체는 물질이 같은 방향으로 이동하는지 또는 반대 방향으로 이동하는지 여부에 따라 심포터(symborter)와 반수송체로 분류할 수 있다.

안티포터

심포터와 안티포터의 기능.

안티포터에서 이온 또는 다른 용질이 막을 가로질러 반대 방향으로 펌핑된다.이들 중 하나는 고농도에서 저농도로 흐를 수 있으며, 이는 저농도 영역에서 고농도로의 다른 용질 수송을 구동하는 엔트로피 에너지를 발생시킨다.

예를 들어 나트륨-칼슘 교환기 또는 역추진기는 3개의 나트륨 이온이 세포 안으로 들어가 하나의 칼슘을 밖으로 [23]운반할 수 있게 해줍니다.세포질 내 칼슘 농도를 [8]낮게 유지하기 위해 심장 근육 세포막 내에서 이 항산화 메커니즘은 중요하다.많은 세포들은 또한 낮은 세포 내 칼슘 농도에서 작동할 수 있는 칼슘 ATPase를 가지고 있고 이 중요한 두 번째 [24]전달자의 정상적이거나 정지된 농도를 설정합니다.그러나 ATP 분해효소는 칼슘 이온을 더 느리게 내보냅니다. 교환기에 의한 칼슘 이온은 초당 30개뿐입니다.이 교환기는 칼슘 농도가 가파르게 상승하거나 "급상승"할 때 작동하며 빠른 [25]회복을 가능하게 합니다.이것은 단일 유형의 이온이 여러 효소에 의해 운반될 수 있다는 것을 보여주며, 효소는 항상 (구성적으로) 활성화될 필요는 없지만 특정한 간헐적 요구를 충족시키기 위해 존재할 수 있습니다.

심포터

심포터는 한 용질종의 고농도에서 저농도로의 내리막 운동을 이용하여 다른 분자를 저농도에서 고농도로(그 농도 구배에 반하여) 위쪽으로 이동시킨다.두 분자는 같은 방향으로 운반된다.

예를 들어 포도당 심볼터 SGLT1은 [26]세포로 수입되는 나트륨 이온 2개마다 하나의 포도당(또는 갈락토스) 분자를 세포로 공수송한다.이 심포터는 소장,[27] 심장,[28][29] 뇌에 있습니다.또한 [30]신장의 각 네프론에서 근위세관의 S3 세그먼트에 위치합니다.그것의 메커니즘은 포도당 보충[31] 요법에 이용된다. 이 메커니즘은 [31]물을 끌어당기기 위해 장의 벽을 통한 설탕의 흡수를 이용한다.SGLT2의 결함은 포도당의 효과적인 재흡수를 방해하여 가족성 신 글루코소뇨를 [32]일으킨다.

벌크 트랜스포트

주요 기사:세포내막증 및 세포외막증

자궁내막증과 세포외막증은 둘 다 물질을 각각 [33]소포를 통해 세포 안팎으로 이동시키는 대량 수송의 형태이다.세포내전증의 경우 세포막은 [34]세포 밖에서 원하는 물질 주위에 접힌다.섭취된 입자는 세포질 안에 있는 소포라고 알려진 주머니 안에 갇히게 된다.종종 리소좀의 효소는 이 과정에 의해 흡수된 분자들을 소화시키기 위해 사용된다.신호 매개 전기 분해를 통해 세포로 들어가는 물질에는 단백질, 호르몬, 성장 및 안정화 [35]인자가 포함된다.바이러스는 세포막과 융합하는 세포내막의 형태를 통해 세포로 들어간다.이것은 바이러스 DNA를 숙주 [36]세포로 밀어 넣는다.

생물학자들은 자궁내막증의 두 가지 주요 유형을 구별한다: 자궁내막증과 식세포증.[37]

  • 선세포증에서, 세포는 액체 입자를 삼켜요. 이 과정은 세포들이 지방 [38]방울을 삼키는 소장에서 일어납니다.
  • 식세포증에서 세포는 고체 [39]입자를 삼킨다.

외세포증은 외세포막과 소포막의 [40]융합을 통해 물질을 제거하는 것을 포함한다.세포외전증의 예는 뇌세포 사이의 시냅스를 통해 신경전달물질의 전달이 될 것이다.

「 」를 참조해 주세요.

레퍼런스

  1. ^ "The importance of homeostasis". Science. me. Retrieved 23 April 2013.
  2. ^ 듀보이스-레몽, E. (1848-84)Untersuchungen über tierische Elektrictét Berlin:재인식하다.(제1권 1848년 제1부, 제1권 1849년 제2부, 제2권 1860년 제1부, 제2권 제2부 1884년)
  3. ^ Rosenberg, T (1948). "On accumulation and active transport in biological systems. I. Thermodynamic considerations". Acta Chem. Scand. 2: 14–33. doi:10.3891/acta.chem.scand.02-0014.
  4. ^ a b "젠스 C.Skou - 전기"Nobelprize.org 를 참조해 주세요.노벨 미디어 AB 2014.Web. 2017년 11월 11일
  5. ^ 인주치, 실비오 등"SGLT-2 억제제와 심혈관계 위험: 제안된 경로와 진행 중인 결과 시험의 재검토"당뇨병 및 혈관질환연구 12.2 (2015) : 90~100. PMC. Web. 2017년 11월 11일
  6. ^ a b 발견 사례: SGLT2 억제제: 당뇨병 치료를 위해 신장을 이용하는 것"미국 보건복지부 국립당뇨병 및 소화기 및 신장질환연구소(www.niddk.nih.gov/news/research-updates/Pages/story-discovery-SGLT2-inhibitors-harnessing-kidneys-help-treat-diabetes.aspx)는 다음과 같습니다.
  7. ^ 액티브 트랜스포트 프로세스가 Wayback Machine에 아카이브된 2012-01-20.Buzzle.com (2010-05-14)2011-12-05에 취득.
  8. ^ a b c Lodish H, Berk A, Zipursky SL 등분자 세포 생물학.제4판뉴욕: W. H. 프리먼, 2000년섹션 15.6, Symporters 및 Antiporters에 의한 공수송.
  9. ^ Lodish H, Berk A, Zipursky SL 등분자 세포 생물학.제4판뉴욕: W. H. 프리먼, 2000년15장 세포막을 통한 수송
  10. ^ 액티브 트랜스포트 2011년 8월 24일 Wayback Machine에서 아카이브.Biologycorner.com 를 참조해 주세요.2011-12-05에 취득.
  11. ^ Nosek, Thomas M. "Section 7/7ch05/7ch05p11". Essentials of Human Physiology. Archived from the original on 2016-03-24.
  12. ^ Reese, Jane B.; Urry, Lisa A.; Cain, Michael L.; Wasserman, Steven A.; Minorsky, Peter V.; Jackson, Robert B. (2014). Tenth Edition, Campbell's Biology (Tenth ed.). United States: Pearson Education Inc. p. 135. ISBN 978-0-321-77565-8.
  13. ^ Cooper, Geoffrey (2009). The Cell: A Molecular Approach. Washington, DC: ASK PRESS. p. 65. ISBN 9780878933006.
  14. ^ a b Kang, Joohyun; Park, Jiyoung (December 6, 2011). "Plant ABC Transporters". The Arabidopsis Book. 9: e0153. doi:10.1199/tab.0153. PMC 3268509. PMID 22303277.
  15. ^ a b Adebesin, Funmilayo (June 30, 2017). "Emission of volatile organic compounds from petunia flowers is facilitated by an ABC transporter". Plant Science. 356 (6345): 1386–1388. Bibcode:2017Sci...356.1386A. doi:10.1126/science.aan0826. PMID 28663500. S2CID 206658803.
  16. ^ a b Crouzet, Jerome (April 7, 2013). "NtPDR1, a plasma membrane ABC transporter from Nicotiana tabacum, is involved in diterpene transport". Plant Molecular Biology. 82 (1–2): 181–192. doi:10.1007/s11103-013-0053-0. PMID 23564360. S2CID 12276939 – via SpringerLink.
  17. ^ Nosek, Thomas M. "Section 7/7ch05/7ch05p12". Essentials of Human Physiology. Archived from the original on 2016-03-24.
  18. ^ a b 알버트 B, 존슨 A, 루이스 J 등세포의 분자생물학.제4판뉴욕: Garland Science; 2002.캐리어 단백질과 활성막 수송.
  19. ^ 알버트 B, 존슨 A, 루이스 J 등세포의 분자생물학.제4판뉴욕: Garland Science; 2002.전자-수송 체인 및 그 프로톤 펌프.
  20. ^ Crane, Robert K.; Miller, D.; Bihler, I. (1961). "The restrictions on possible mechanisms of intestinal transport of sugars". In Kleinzeller, A.; Kotyk, A. (eds.). Membrane Transport and Metabolism. Proceedings of a Symposium held in Prague, August 22–27, 1960. Prague: Czech Academy of Sciences. pp. 439–449.
  21. ^ Wright EM, Turk E (February 2004). "The sodium/glucose cotransport family SLC5". Pflügers Arch. 447 (5): 510–8. doi:10.1007/s00424-003-1063-6. PMID 12748858. S2CID 41985805. Crane in 1961 was the first to formulate the cotransport concept to explain active transport [7]. Specifically, he proposed that the accumulation of glucose in the intestinal epithelium across the brush border membrane was coupled to downhill Na+
     transport cross the brush border. This hypothesis was rapidly tested, refined and extended [to] encompass the active transport of a diverse range of molecules and ions into virtually every cell type.
  22. ^ Boyd CA (March 2008). "Facts, fantasies and fun in epithelial physiology". Exp. Physiol. 93 (3): 303–14 (304). doi:10.1113/expphysiol.2007.037523. PMID 18192340. the insight from this time that remains in all current text books is the notion of Robert Crane published originally as an appendix to a symposium paper published in 1960 (Crane et al. 1960). The key point here was 'flux coupling', the cotransport of sodium and glucose in the apical membrane of the small intestinal epithelial cell. Half a century later this idea has turned into one of the most studied of all transporter proteins (SGLT1), the sodium–glucose cotransporter.
  23. ^ Yu, SP; Choi, DW (June 1997). "Na+-Ca2+ exchange currents in cortical neurons: concomitant forward and reverse operation and effect of glutamate". The European Journal of Neuroscience. 9 (6): 1273–81. doi:10.1111/j.1460-9568.1997.tb01482.x. PMID 9215711. S2CID 23146698.
  24. ^ Strehler, EE; Zacharias, DA (January 2001). "Role of alternative splicing in generating isoform diversity among plasma membrane calcium pumps". Physiological Reviews. 81 (1): 21–50. doi:10.1152/physrev.2001.81.1.21. PMID 11152753. S2CID 9062253.
  25. ^ Patterson, M; Sneyd, J; Friel, DD (January 2007). "Depolarization-induced calcium responses in sympathetic neurons: relative contributions from Ca2+ entry, extrusion, ER/mitochondrial Ca2+ uptake and release, and Ca2+ buffering". The Journal of General Physiology. 129 (1): 29–56. doi:10.1085/jgp.200609660. PMC 2151609. PMID 17190902.
  26. ^ Wright, EM; Loo, DD; Panayotova-Heiermann, M; Lostao, MP; Hirayama, BH; Mackenzie, B; Boorer, K; Zampighi, G (November 1994). "'Active' sugar transport in eukaryotes". The Journal of Experimental Biology. 196: 197–212. doi:10.1242/jeb.196.1.197. PMID 7823022.
  27. ^ Dyer, J; Hosie, KB; Shirazi-Beechey, SP (July 1997). "Nutrient regulation of human intestinal sugar transporter (SGLT2) expression". Gut. 41 (1): 56–9. doi:10.1136/gut.41.1.56. PMC 1027228. PMID 9274472.
  28. ^ Zhou, L; Cryan, EV; D'Andrea, MR; Belkowski, S; Conway, BR; Demarest, KT (1 October 2003). "Human cardiomyocytes express high level of Na+/glucose cotransporter 1 (SGLT2)". Journal of Cellular Biochemistry. 90 (2): 339–46. doi:10.1002/jcb.10631. PMID 14505350. S2CID 21908010.
  29. ^ Poppe, R; Karbach, U; Gambaryan, S; Wiesinger, H; Lutzenburg, M; Kraemer, M; Witte, OW; Koepsell, H (July 1997). "Expression of the Na+-D-glucose cotransporter SGLT1 in neurons". Journal of Neurochemistry. 69 (1): 84–94. doi:10.1046/j.1471-4159.1997.69010084.x. PMID 9202297. S2CID 34558770.
  30. ^ Wright EM (2001). "Renal Na+-glucose cotransporters". Am J Physiol Renal Physiol. 280 (1): F10–8. doi:10.1152/ajprenal.2001.280.1.F10. PMID 11133510.
  31. ^ a b Loo, DD; Zeuthen, T; Chandy, G; Wright, EM (12 November 1996). "Cotransport of water by the Na+/glucose cotransporter". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (23): 13367–70. Bibcode:1996PNAS...9313367L. doi:10.1073/pnas.93.23.13367. PMC 24099. PMID 8917597.
  32. ^ Wright EM, Hirayama BA, Loo DF (2007). "Active sugar transport in health and disease". Journal of Internal Medicine. 261 (1): 32–43. doi:10.1111/j.1365-2796.2006.01746.x. PMID 17222166.
  33. ^ Reece, Jane; Urry, Lisa; Cain, Michael; Wasserman, Steven; Minorsky, Peter; Jackson, Robert (2014). Tenth Addition Campbell Biology (Tenth Addition ed.). United States of America: Pearson Education, Inc. p. 137. ISBN 978-0-321-77565-8.
  34. ^ 플라즈마 막에서 세포로 운반: 엔도사이토시스– 세포의 분자생물학– NCBI 책장.Ncbi.nlm.nih.gov (2011-10-03)2011-12-05에 취득.
  35. ^ 파스턴, 아이라, 윌링햄, 마크 C.(1985년).엔도사이토시스스프링거, 보스턴, 매사추세츠. 페이지 1~44.doi: 10.1007/978-1-4615-6904-6_1.ISBN 9781461569060.
  36. ^ Jahn, Reinhard; Südhof, Thomas C. (1999). "Membrane Fusion and Exocytosis". Annual Review of Biochemistry. 68 (1): 863–911. doi:10.1146/annurev.biochem.68.1.863. ISSN 0066-4154. PMID 10872468.
  37. ^ 셀: 셀과 환경 간의 재료 교환에 관한 두 가지 주요 프로세스 2010년 8월 11일 웨이백 머신에서 아카이브.탁당아랄린(2009-10-26).2011-12-05에 취득.
  38. ^ 선세포증: 정의. biology-online.org
  39. ^ 식세포증코스.washington.edu 를 참조해 주세요.2011-12-05에 취득.
  40. ^ Jahn, Reinhard; Südhof, Thomas C. (1999). "Membrane Fusion and Exocytosis". Annual Review of Biochemistry. 68: 863–911. doi:10.1146/annurev.biochem.68.1.863. PMID 10872468.

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