스캡토미자 플라바

Scaptomyza flava
스캡토미자 플라바
Scaptomyza flava.jpg
스캡토미자 플라바
과학적 분류 edit
킹덤: 애니멀리아
망울: 절지동물
클래스: 살충제
순서: 디프테라
패밀리: 드로소필라과
속: 스캡토미자
종:
S. 플라바
이항식 이름
스캡토미자 플라바
1823년 팔렌

Scaptomyza flava는 드로소필리과에 속하는 초식성 잎 채굴 파리 종이다.라틴어로 플라바는 황금이나 노란색을 의미한다.[1]파리는 황색에서 진한 갈색으로 색상은 약 2.5mm이다.[2][3]유럽과 뉴질랜드에서[4][5][6] 유충은 아루굴라, 브라시카, 브로콜리, 브뤼셀나물, 복초이, 배추, 카놀라, 콜리플라워, 고추냉이, 케일라비, 나프타 배추, 무, 라피니, 루타바가, 순무, 와사비, 물냉장류 등의 순서로 브라시칼레 식물의 해충이다.[4]뉴질랜드에서는 샐러드 브라시카와 교배하는 숙주 종으로 범위가 넓어졌는데, 그 종류로는 아기의 숨결로 알려진 석고필라(Caryophila)와 파브과(Pisum sativum)에 속하는 페아(Pisum sativum) 등이 있다.[6]보다 전형적으로 S.플라바는 브라시칼레스 내에서 과점적이다.스냅토밀자(Scaptomyza)는 드로스포필라과에서 특이하다. 왜냐하면 그 집단은 정말로 초식적인 종을 포함하기 때문이다.[7][8][6]다른 초식성 드로소필리드로는 익는[9] 동안 매우 일찍 과일을 공격하는 D. 스즈키와 아프리카와 아시아에서 온 로디포사속 내의 종들이 있는데, 이 종들 역시 잎 광부들을 포함한다.[10]대부분의 드로소필리드들은 썩어가는 초목과 수액과 관련된 미생물을 먹고 산다.[11]

분배

스캡토미자 플라바는 유럽, 아시아, 북아메리카 전역에서 흔히 볼 수 있는 홀아북극으로, 뉴질랜드에서 처음 잎 채굴 아그로미지로 오인된 곳에서 최근에야 발견되었다.[3][6]Scaptomyza속에는 남극대륙을 제외한 모든 대륙에서 발견되는 종들이 포함되어 있다.[12]

필로제니

스캡토미자 플라바는 디프테라, 드로소필리아과, 스캡토미자과에 속하며, 272종의 다른 종에 속한다.[13]Scaptomyza는 D. mojavensis, D. virliis, D. d. 그림샤위를 포함하는 paraphylotic drosophila 혈통 내에 중첩된 단핵성 속이다.[14]Scaptomyza 속은 하와이 드로필라 방사선과 관련하여 자매 또는 파라필레틱이다.[15][16][17][18]Scaptomyza flava는 Subgenus Scaptomyza의 일원으로, 의무적인 잎 채굴 종을 포함하는 것으로 알려진 Scaptomyza의 유일한 하위 유전이다.[7]그러나 하위유전 부노스토마 속 S.플라벨라는 뉴질랜드 바다 셀러리의 능력 있는 잎채광부지만 썩어가는 잎에 다 자란 암컷 오비포시트가 들어가 살아 있는 잎은 썩어가는 잎에서 이동하는 유충의 공격을 받는다.[19]

Scaptomyza flava는 원래 1823년에 Drosopila flava로 설명되었으나, 후에 Scaptomyza 속주가 세워졌을 때 Scaptomyza flava로 다시 설명되었다(신체의 길이에 비해 긴 날개를 포함한 다른 Drosopila와의 형태적 차이점에 기초함).이 종은 이전에 S. 아피칼리스와 S. 플라볼라라고도 불렸다.[8]S.플라바와 가장 밀접하게 연관되어 있는 살아있는 친척은 S. nigrita와 쇄골 누이를 이루는 S. montana이다.[8][20]겨자를 먹이는 스카토미자와 더 먼 관계가 있는 것은 카리오필룸과를 먹고 사는 S. 그라미눔이다.

인생사

라이프 사이클

포획된 상태에서, 스캡토미자 플라바 수명의 기간은 대략 3주이며, 평균 난자에서 성체까지의 성장 기간은 약 20.52일이다.생명은 D. 멜라노가스터처럼 효모를 먹이는 드로소필라보다 2배 이상 길며, 잎이 영양가가[21] 떨어지고 알과 잎 채굴 애벌레에 대한 강력한 화학적 방어반응을 일으키기 때문에 차이가 있을 수 있다.[8][22][23]

소제너스의 다른 성인 암컷들과 마찬가지로, 치아와 같은 감각으로 20-30개의 박리된 (강화되고 어두워진) 난모시터 밸브를 가지고 있다.[24]틀니트 난소체는 영양 기관과 알을 낳는 기관으로 사용된다.구멍을 내기 위해 암컷은 잎의 아랫부분으로 기어가며 난포기의 뭉툭한 끝을 이용하여 두 개의 판막을 좌우로 움직여 잎에 구멍(스티플이라고도 함)을 새기고, 대개 윗표피는 그대로 둔다.일단 상처에서 난포자를 수축시키면, 그들은 시계 반대 방향으로 회전하고 주둥이를 확장하여 상처로 스며드는 주스를 마신다.[8][24]그 결과 다 자란 암컷은 종종 녹색 복부를 갖게 된다.달걀은 암컷이 숙주 식물에 도입한 먹이 구멍에 낳는다.유충은 암컷이 구멍에 알을 침전시킨 후 48시간 후에 어디선가 부화한다.일단 부화하면 유충은 잎사귀 안의 메소필 조직을 먹고, 페티오를 향해 나아가면서 독사광산을 만들고, 성숙할 때(두 마리의 어금니를 더 완성하는 것은 유충이었다) 또는 새 잎으로 이동하면서 얼룩광산을 만든다.대부분의 개인은 여러 단계의 개발을 통해 같은 발전소에 남아있다.[8]그러면 유충은 잎에 남거나 흙에 번데기가 된다.[6][8]

스캡토미자 플라바 암컷
스캡토미자 플라바 수

짝짓기

스냅토미자 플라바는 대부분의 동물들과 마찬가지로 동의보감 교미에도 참여한다.수컷이 실험실에서 암컷에게 노출되면 짝짓기 의식을 시작하는 데 2~3분이 걸린다.일반적으로 수컷이 암컷에게 다가가 구애의 표시 속에서 날개를 퍼덕이며 앞다리로 암컷의 몸을 만진다.암컷은 수컷이 올라올 때 움직이지 않게 되고, 짝짓기가 이어진다.중단 없는 교미 시간은 보통 20분 정도 지속된다.짝짓기 후 수컷들은 날개를 진동시키고 암컷을 남겨둔 채 더 이상의 관심을 보이지 않는다.[6]

짝짓기 디스플레이는 짝짓기 수컷과 처녀 수컷의 빈도가 달랐다.짝을 이룬 수컷은 처녀파리보다 구애행동을 실천하고 짝짓기에 성공할 확률이 훨씬 높다.이것은 수컷 S. 플라바가 이전의 짝짓기 경험으로부터 배울 수 있다는 것을 암시한다.이러한 행동은 먼 곳과 관련이 있는 D. 멜라노가스터에서도 보고되었다.[6]연구실에서는 파리의 90%가 한두 번 짝짓기를 하고, 훨씬 적은 비율의 짝짓기를 세 번 이상 한다.[25]S.플라바의 짝짓기 패턴은 그들의 순환 리듬과 연결되어 있다.[25]

난산과 생식력

스캡토미자 플라바는 출현 후 약 2.7일 후에 난소를 시작하며, 최고 난소는 출현 후 5일에서 10일 사이에 일어난다.평생 동안 평균 암컷은 약 130개의 난자를 생산했고, 그 중 약 71개는 수정되었다.[25]난산과 다산성은 암컷이 난소를 시작한 후 처음 5일에서 10일 사이에 최고조에 달하며, 생존 가능한 난자의 약 50%가 첫 14일 이내에 알을 낳는다.[25]

식량원

다이어트

Scaptomyza flava 애벌레는 초식성 내포충이다. 왜냐하면 그들은 살아있는 식물의 잎에서 그들의 미성숙 발육 전체를 살고 소비하고 완성하기 때문이다.다 자란 암컷도 아그로미즈과의 것과 마찬가지로 난소제로 먹이 구멍을 만들고 상처 속으로 스며드는 잎을 먹고 살기 때문에 초식동물이다.

애벌레

scaptomyza flava 애벌레는 부패하는 식물 물질을 소화할 수 있는 다른 초식성 곤충과는 달리 식재료로 살아있는 식물에 의존한다.[22]Scaptomyza flava 애벌레가 살고 Brassicales의 식물을 먹고 산다.[8][6]대부분의 다른 드로소필리드들은 효모, 박테리아, 부패하는 식물조직의 혼합물을 먹고 살 수 있으며 효모를 함유한 용기에 길러질 수 있지만 S. 플라바는 이것들 또는 시험한 다른 용기에 대한 개발을 완료하지 못한다.S.플라바의 영양 수준은 고도로 고갈된 질소 프로파일에 근거하여 수액을 공급하는 진딧물과 더 유사하다.[21]이 행동의 한 가지 이점은 병원균으로부터 보호하는 것이지만, 이것은 기생충 공격에 대한 민감성 증가의 대가로 얻어진다.[8]반면에, 이 발전소는 또한 S. 플라바의 공격을 감지한 후, 공장의 아스몬트 경로에서 방어 화학적 농도를 크게 증가시킨다.[8]자스모네이트 경로의 하류에는 공격 후 상향 조정되는 글루코시놀레이트의 생합성에 관여하는 유전자가 있다.일부 글루코시놀레이트(알리파이트)는 안정된 겨자유(이소티오시아네이트)로 분해되어 환경에서 지속되지만(와사비에서 발견되기도 함) 세포 내 DNA와 시스테인, 리신 잔류물에 빠르게 결합되는 고도로 전기적인 독성 분자다.S. flava와 D. melanogaster는 인간과 마찬가지로 머카프투르산 경로를 이용하여 겨자 기름을 해독한다.[22]그러나 브라시칼레스를 먹고 사는 스캇토미자 종의 글루타티온 S-전달효소 효소는 겨자 기름을 해독하는 데 있어서 어떤 동물에게서도 알려진 것보다 더 효율적이다.[21]

잎 채굴에 의한 브라시카 잎 손상

성인

다 자란 암컷도 유충과 같은 식물을 먹고 산다.그러나, 그들은 식물을 안에서 밖으로 먹는 대신, 난자제로 만드는 구멍에 의해 유발된 식물 분비물을 먹고 산다.[8]

초식물의 진화

초식동물은 Scaptomyza속에만 있는 것이 아니다: 살아있는 곤충 주문의 3분의 1은 초식동물을 포함하고 있고 모든 살아있는 곤충 종의 2분의 1은 초식동물이다.[26]따라서 초식학은 진화론적 관점에서 가장 성공적인 인생사라고 할 수 있다.디프테라에서는 초식동물이 적어도 25번은 독자적으로 진화했다.[27]특히, Scaptomyza에 있는 초식동물은 6백만년에서 1600만년 사이에 진화했을 것으로 예상되며, 가장 최근의 추정치는 이 진화적 사건을 약 1350만년 전으로 보고 있다.[12][28]대부분의 Scaptomyza 종은 초식성이 아니며 모든 생물종의 절반 이상(그러나 알려진 잎 채굴자는 없음)은 거미 알 주머니 파라시토이드에서부터 잎사귀 번식(미생물을 먹이고 심지어 끈적거리는 표면에[15][12] 갇힌 죽은 절지동물을 먹음)에 이르기까지 다양한 삶의 이력을 가진 하와이가 원산지다.

분자 계통생리학적 분석은 초식동물이 스캡토미자속에서만 진화했음을 시사한다.[12]드로소필라과의 다른 종은 효모의 냄새를 탐지하는 데 강한 친화력을 가지고 있는데, S.플라바는 혈통이 효모에 의해 생성되는 알락성 에스테르에 동조하기 위해 D. 멜라노가스터에서 알려진 악취 수용체(ORs)를 암호화하는 세 유전자를 잃었기 때문에 진화적으로 상실해 버린 특성이다.이 OR들을 부호화하는 유전자들이 D. 멜라노가스터에서 녹아웃되면 파리는 이러한 휘발성 물질을 향해 제대로 방향을 잡지 못할 수 있다.[28]효모를 감지하는 능력의 상실은 초식물의 진화로 이어지는 진화적 사건과 관련이 있다.[28]성인 암컷 S. 플라바는 브라시칼레스 식물의 대부분의 전문가들처럼 휘발성 머스타드 오일에 끌리고 있는데,[29] 이 식물들은 숙주 식물의 지표로서 이러한 독성 화학물질을 공동 선택했다.[30]최근 S.플라바 계통에서 빠르게 진화한 복제된 Or67b 유전자에 의해 인코딩된 ORs는 상처 입은 브라시칼레스 식물에서 방출되는 휘발성 머스터드 오일에 맞춰져 있는 것으로 밝혀졌다.[29]비슷한 현상이 다이아몬드백나방 플루텔라 실로스텔라에서도 독립적으로 일어났다.[31]이러한 OR 중 하나인 Or67b가 D. 멜라노가스터에서 두 개의 서로 다른 후각 회로로 표현될 때 파리는 머스터드 오일에 끌리게 되는데, 이것은 D. 멜라노가스터에는 일반적인 것이 아니다.이것은 S. flava Or67b가 썩어가는 과일에서 효모를 먹고 사는 먼 친척으로 인위적으로 표현될 때 겨자 기름에 끌리는 행동을 유발할 수 있다는 것을 암시하며, 어쩌면 단순한 유전적 변화를 통해 독성 식물에 대한 전문화가 어떻게 일어날 수 있는지를 설명할 수 있다.유비쿼터스 식물 호르몬 살리실산(salicylic acid)의 파생물질인 메틸 살리실산(methyl salicylate)도 뉴질랜드의 덫에 S. flava fly를 유인하는 것으로 알려져 있다.[32]S. 플라바는 바나나와 이스트를 미끼로 한 덫에서 포획되지 않는다.대부분의 드로소필리드들, 특히 과일 썩는 것과 관련된 것들은 에탄올과 마주치며, 에탄올을 견디고 심지어 파라시토이드와 싸우는 데 그것을 사용하는 메커니즘을 발전시켰다.[33]비록 드로소필드가 벡터 효모를 하고 상호주의자들일 수 있지만, 스캡토미자가 공격한 식물들은 이 파리들에 의해 피해를 입는다.[34]그 결과, 그들은 상처가 감지된 후 음식과 서식지를 살기 힘든 환경으로 만들기 위해 빠른 화학 방어를 한다.[35]자스모네이트 또는 글루코시놀레이트 경로가 숙주 식물에서 녹아웃되면 S.플라바 유충이 더 좋은 성능을 발휘하여 이러한 경로가 파리에 대한 저항 수준에 관여함을 시사한다.[8][22]반대로 식물을 자스몬이트로 미리 처리하면 유충은 더 나쁜 작용을 한다.[35]

글루코시놀레이트 우회

S.플라바와 S. 니그리타 종은 이소티오시아네이트를 포함하는 글루코시놀레이트의 가수분해 생성물을 부분적으로 대사하는 능력을 진화시켰으며, 방어기제로 겨자 식물과 친척이 합성하는 독성 화학물질이다.드로소필라과의 다른 종들은 대부분 이러한 독소를 극복하지 못한다.글루코시놀레이트는 S.플라바에서 스트레스 관련 유전자를 조절하는 역할을 하는데, 이는 다른 초식동물이 화학물질의 독성 효과를 우회하기 위해 개발한 특화된 시스템과 다르다.[22]

상호주의

스캡토미자 플라바 성체 암컷과 유충은 숙주 식물에게 박테리아를 접종하여 먹이를 주는 과정을 돕는다.구체적으로 S.플라바는 숙주공장의 항허브 방어를 방해하는 녹농균 주사기를 숙주공장에 도입할 수 있다.성인 암컷과 유충 모두 박테리아 벡터 역할을 할 수 있다.스캡토미자 플라바 유충은 P. 주사기에 감염된 식물을 먹는 것을 선호할 뿐만 아니라, 실제로 감염된 식물을 먹일 때 더 빨리 발달하는 것으로 나타났다.[36]상대적인 S. 니그리타는 식물권 박테리아와 복잡한 연관성을 가지고 있는데, 여기에는 잎 채굴자와 미생물 사이의 대립성, 상호성, 그리고 유사성이 포함될 가능성이 있다.[37]

수평유전자전달

S.플라바의 게놈 서열에서 박테리아나 페이지에서 유래된 독소를 암호화하는 유전자가 확인되었다.[38]이들 유전자는 앞서 진딧물을 감염시키는 내포생성균에서 페이지 유전자가 발견됐을 때 파라시토이드 말벌 공격에 내성을 부여하는 APSE 페이지 독소 화물 유전자와 연관성이 있는 것으로 밝혀졌다.[39]

인간과의 상호작용

scaptomyza flava는 다양한 농업용 스테이플을 먹고 사는데, 종종 그들이 살고 있는 식물을 손상시킨다.다양한 식량 작물에 대한 과도한 주입은 수확량을 감소시킬 수 있지만, 파리를 억제하기 위한 구체적인 조치는 보통 취해지지는 않는다.[6]

모델 유기체로서

Scaptomyza flava는 식물과 초식성 절지동물의 상호작용을 연구하기 위한 모델로 개발되고 있다.[8][40]'과일파리'인 드로소필라 멜라노가스터와 상대적으로 밀접하게 연관돼 있기 때문에 게놈에서 유전자의 진화가 더 쉽게 특징지어진다.그 결과 살아 있는 식물을 먹이는 적응에 관여하고 진화해온 특정한 유전적 변화는 더 쉽게 확인될 수 있다.파리는 자연에서 아라비도피스 탈리아나를 공격하며, 이 숙주식물이 최고의 식물 모델 유기체이기 때문에 S. 플라바, 특히 저항과 관련된 사람들과의 상호작용을 중재하는데 중요한 유전자는 쉽게 연구될 수 있다.[41]

참조

  1. ^ "Latin Definition for: flavus, flava, flavum (ID: 20735) - Latin Dictionary and Grammar Resources - Latdict". latin-dictionary.net. Retrieved 2019-10-02.
  2. ^ "Scaptomyza flava NatureSpot". www.naturespot.org.uk. Retrieved 2019-09-30.
  3. ^ a b "Scaptomyza (Scaptomyza) flava (Fallen, 1823) Fauna Europaea". fauna-eu.org. Retrieved 2019-09-30.
  4. ^ a b Petruzzello M (December 2014). "List of plants in the family Brassicaceae". Encyclopedia Britannica. Retrieved 2019-09-30.
  5. ^ "Scaptomyza (Scaptomyza) flava (Fallen, 1823) Fauna Europaea". fauna-eu.org. Retrieved 2019-09-30.
  6. ^ a b c d e f g h i Martin NA (January 2004). "History of an invader, Scaptomyza flava (Fallen, 1823) (Diptera: Drosophilidae)". New Zealand Journal of Zoology. 31 (1): 27–32. doi:10.1080/03014223.2004.9518356. ISSN 0301-4223. S2CID 85011777.
  7. ^ a b Hackman W (1959). "On the genus Scaptomyza Hardy (Diptera Drosophilidae)". Acta Zoologica Fenica. 97: 1–72.
  8. ^ a b c d e f g h i j k l m Whiteman NK, Groen SC, Chevasco D, Bear A, Beckwith N, Gregory TR, et al. (March 2011). "Mining the plant-herbivore interface with a leafmining Drosophila of Arabidopsis". Molecular Ecology. 20 (5): 995–1014. doi:10.1111/j.1365-294X.2010.04901.x. PMC 3062943. PMID 21073583.
  9. ^ Walsh DB, Bolda MP, Goodhue RE, Dreves AJ, Lee J, Bruck DJ, et al. (2011-04-01). "Drosophila suzukii (Diptera: Drosophilidae): Invasive Pest of Ripening Soft Fruit Expanding its Geographic Range and Damage Potential". Journal of Integrated Pest Management. 2 (1): G1–G7. doi:10.1603/ipm10010. ISSN 2155-7470.
  10. ^ Kim BY, Wang JR, Miller DE, Barmina O, Delaney E, Thompson A, et al. (July 2021). "Highly contiguous assemblies of 101 drosophilid genomes". eLife. 10: e66405. doi:10.7554/eLife.66405. PMC 8337076. PMID 34279216.
  11. ^ Markow TA, O'Grady PM (2006). Drosophila : a guide to species identification and use. Elsevier. ISBN 0-08-045409-7. OCLC 74908130.
  12. ^ a b c d Lapoint RT, O'Grady PM, Whiteman NK (October 2013). "Diversification and dispersal of the Hawaiian Drosophilidae: the evolution of Scaptomyza". Molecular Phylogenetics and Evolution. 69 (1): 95–108. doi:10.1016/j.ympev.2013.04.032. PMC 3769216. PMID 23669011.
  13. ^ "ADW: Scaptomyza: CLASSIFICATION". animaldiversity.org. Retrieved 2019-09-30.
  14. ^ Clark AG, Eisen MB, Smith DR, Bergman CM, Oliver B, Markow TA, et al. (November 2007). "Evolution of genes and genomes on the Drosophila phylogeny". Nature. 450 (7167): 203–218. Bibcode:2007Natur.450..203C. doi:10.1038/nature06341. PMID 17994087. S2CID 2416812.
  15. ^ a b O'Grady P, Desalle R (April 2008). "Out of Hawaii: the origin and biogeography of the genus Scaptomyza (Diptera: Drosophilidae)". Biology Letters. 4 (2): 195–199. doi:10.1098/rsbl.2007.0575. PMC 2429922. PMID 18296276.
  16. ^ Lapoint RT, O'Grady PM, Whiteman NK (October 2013). "Diversification and dispersal of the Hawaiian Drosophilidae: the evolution of Scaptomyza". Molecular Phylogenetics and Evolution. 69 (1): 95–108. doi:10.1016/j.ympev.2013.04.032. PMC 3769216. PMID 23669011.
  17. ^ Katoh T, Izumitani HF, Yamashita S, Watada M (January 2017). "Multiple origins of Hawaiian drosophilids: Phylogeography ofScaptomyzaHardy (Diptera: Drosophilidae)". Entomological Science. 20 (1): 33–44. doi:10.1111/ens.12222. ISSN 1343-8786. S2CID 88697632.
  18. ^ Church SH, Extavour CG (2021-07-09). "Phylotranscriptomics reveals discordance in the phylogeny of Hawaiian Drosophila and Scaptomyza (Diptera: Drosophilidae)". bioRxiv. doi:10.1101/2021.07.08.451653. S2CID 235799423.
  19. ^ Martin NA (2014). "Scaptomyza (Bunostoma) flavella (Diptera: Drosophilidae) and the evolution of leaf mining". The Weta. 47: 8–12.
  20. ^ Suvorov A, Kim BY, Wang J, Armstrong EE, Peede D, D'Agostino ER, et al. (January 2021). "Widespread introgression across a phylogeny of 155 Drosophila genomes". bioRxiv. doi:10.1016/j.cub.2021.10.052. PMID 34788634. S2CID 244168995.
  21. ^ a b c Gloss AD, Dittrich AC, Lapoint RT, Goldman-Huertas B, Verster KI, Pelaez JL, et al. (2019-09-12). "Evolution of herbivory remodels a Drosophila genome": 767160. doi:10.1101/767160. S2CID 203409107. {{cite journal}}:Cite 저널은 필요로 한다. journal=(도움말)
  22. ^ a b c d e Whiteman NK, Gloss AD, Sackton TB, Groen SC, Humphrey PT, Lapoint RT, et al. (2012). "Genes involved in the evolution of herbivory by a leaf-mining, Drosophilid fly". Genome Biology and Evolution. 4 (9): 900–916. doi:10.1093/gbe/evs063. PMC 3516228. PMID 22813779.
  23. ^ Gloss AD, Vassão DG, Hailey AL, Nelson Dittrich AC, Schramm K, Reichelt M, et al. (September 2014). "Evolution in an ancient detoxification pathway is coupled with a transition to herbivory in the drosophilidae". Molecular Biology and Evolution. 31 (9): 2441–2456. doi:10.1093/molbev/msu201. PMC 4137718. PMID 24974374.
  24. ^ a b Pelaez JN, Gloss AD, Ray JF, Whiteman NK (2020-05-08). "Evolution and genetic basis of the plant-penetrating ovipositor, a key adaptation in herbivorous Drosophilidae". bioRxiv. doi:10.1101/2020.05.07.083253. S2CID 218582538.
  25. ^ a b c d Shakeel M, He XZ, Martin NA, Hanan A, Wang Q (2009-08-01). "Diurnal periodicity of adult eclosion mating and oviposition of the european leafminer Scaptomyza flava (Falln) (Diptera Drosophilidae)". New Zealand Plant Protection. 62: 80–85. doi:10.30843/nzpp.2009.62.4789. ISSN 1179-352X.
  26. ^ Wiens JJ, Lapoint RT, Whiteman NK (September 2015). "Herbivory increases diversification across insect clades". Nature Communications. 6 (1): 8370. Bibcode:2015NatCo...6.8370W. doi:10.1038/ncomms9370. PMC 4598556. PMID 26399434.
  27. ^ Wiegmann BM, Trautwein MD, Winkler IS, Barr NB, Kim JW, Lambkin C, et al. (April 2011). "Episodic radiations in the fly tree of life". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (14): 5690–5695. Bibcode:2011PNAS..108.5690W. doi:10.1073/pnas.1012675108. PMC 3078341. PMID 21402926.
  28. ^ a b c Goldman-Huertas B, Mitchell RF, Lapoint RT, Faucher CP, Hildebrand JG, Whiteman NK (March 2015). "Evolution of herbivory in Drosophilidae linked to loss of behaviors, antennal responses, odorant receptors, and ancestral diet". Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (10): 3026–3031. Bibcode:2015PNAS..112.3026G. doi:10.1073/pnas.1424656112. PMC 4364187. PMID 25624509.
  29. ^ a b Matsunaga T, Reisenman CE, Goldman-Huertas B, Brand P, Miao K, Suzuki HC, Verster KI, Ramírez SR, Whiteman NK (2019-12-28). "Evolution of olfactory receptors tuned to mustard oils in herbivorous Drosophilidae". bioRxiv. doi:10.1101/2019.12.27.889774. S2CID 233256068.
  30. ^ Fraenkel GS (May 1959). "The raison d'ĕtre of secondary plant substances; these odd chemicals arose as a means of protecting plants from insects and now guide insects to food". Science. 129 (3361): 1466–1470. doi:10.1126/science.129.3361.1466. PMID 13658975.
  31. ^ Cai L, Cheng X, Qin J, Xu W, You M (December 2020). "Expression, purification and characterization of three odorant binding proteins from the diamondback moth, Plutella xylostella". Insect Molecular Biology. 29 (6): 531–544. doi:10.1111/imb.12664. PMID 32715559. S2CID 220797363.
  32. ^ Orre GU, Wratten SD, Jonsson M, Hale RJ (April 2010). "Effects of an herbivore-induced plant volatile on arthropods from three trophic levels in brassicas". Biological Control. 53 (1): 62–67. doi:10.1016/j.biocontrol.2009.10.010. ISSN 1049-9644.
  33. ^ Milan NF, Kacsoh BZ, Schlenke TA (March 2012). "Alcohol consumption as self-medication against blood-borne parasites in the fruit fly". Current Biology. 22 (6): 488–493. doi:10.1016/j.cub.2012.01.045. PMC 3311762. PMID 22342747.
  34. ^ Collinge SK, Louda SM (1988-09-01). "Patterns of Resource Use by a Drosophilid (Diptera) Leaf Miner on a Native Crucifer". Annals of the Entomological Society of America. 81 (5): 733–741. doi:10.1093/aesa/81.5.733. ISSN 1938-2901.
  35. ^ a b Humphrey PT, Gloss AD, Alexandre NM, Villalobos MM, Fremgen MR, Groen SC, et al. (May 2016). "Aversion and attraction to harmful plant secondary compounds jointly shape the foraging ecology of a specialist herbivore". Ecology and Evolution. 6 (10): 3256–3268. doi:10.1002/ece3.2082. PMC 4829532. PMID 27096082.
  36. ^ Groen SC, Humphrey PT, Chevasco D, Ausubel FM, Pierce NE, Whiteman NK (January 2016). "Pseudomonas syringae enhances herbivory by suppressing the reactive oxygen burst in Arabidopsis". Journal of Insect Physiology. 84: 90–102. doi:10.1016/j.jinsphys.2015.07.011. PMC 4721946. PMID 26205072.
  37. ^ Humphrey PT, Whiteman NK (February 2020). "Insect herbivory reshapes a native leaf microbiome". Nature Ecology & Evolution. 4 (2): 221–229. doi:10.1038/s41559-019-1085-x. PMC 7332206. PMID 31988447.
  38. ^ Verster KI, Wisecaver JH, Karageorgi M, Duncan RP, Gloss AD, Armstrong EE, et al. (October 2019). Malik H (ed.). "Horizontal Transfer of Bacterial Cytolethal Distending Toxin B Genes to Insects". Molecular Biology and Evolution. 36 (10): 2105–2110. doi:10.1093/molbev/msz146. PMC 6759069. PMID 31236589.
  39. ^ Oliver KM, Degnan PH, Hunter MS, Moran NA (August 2009). "Bacteriophages encode factors required for protection in a symbiotic mutualism". Science. 325 (5943): 992–994. Bibcode:2009Sci...325..992O. doi:10.1126/science.1174463. PMC 5473335. PMID 19696350.
  40. ^ "Research in the Whiteman Lab". The Whiteman Lab. We have developed a new model system for studying plant-herbivore interactions, involving the drosophilid fly Scaptomyza flava and the plant Arabidopsis thaliana, which it attacks in nature.
  41. ^ Mitchell-Olds, Thomas (December 2001). "Arabidopsis thaliana and its wild relatives: a model system for ecology and evolution". Trends in Ecology & Evolution. 16 (12): 693–700. doi:10.1016/s0169-5347(01)02291-1. ISSN 0169-5347.

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