식물 조직 검사

Plant tissue test

식물의 영양소 함량은 해당 식물의 조직 샘플을 테스트하여 평가할 수 있습니다.식물의 영양 상태를 알면 비료 적용이 미세 조정될 수 있기 때문에 이러한 테스트는 농업에서 중요하다.질소는 가장 일반적으로 식물의 성장을 제한하고 가장 잘 관리되는 영양소이다.

가장 유용한 시간

조직 검사는 작물의 생리에 대한 추가 정보를 제공하기 때문에 거의 항상 유용합니다.조직 테스트는 특정 상황에서 특히 유용합니다.

  • 생육기 동안 작물의 질소 상태를 모니터링하기 위한 것입니다.토양 테스트는 일반적으로 심기 전에 수행됩니다.
  • 온실에서의 수경 재배와 같이 고도로 통제된 환경에서, 농작물은 물 공급에 영양분을 지속적으로 공급해야 한다.일시적인 영양소 부족도 수확량을 감소시킬 수 있다.토양 검사 결과로는 실제 영양소 섭취와 영양소 이동성을 밝힐 수 없습니다.토양 테스트는 작물 질소 상태를 관리하기에 불충분할 수 있습니다.토양 테스트는 느리게 방출되는 퇴비와 수막에서 작물을 재배할 때 더 적합할 수 있다.
  • 영양소 응용 프로그램이 다른 영양소의 흡수를 방해하거나 이동성을 저해할 위험이 있는 경우.과다 도포 시 구리와 같은 미세 영양소를 고농도로 함유한 가금류 폐기물을 도포하는 등 독성 상태를 초래할 수 있습니다.
  • 작물의 질소 농도가 일정 한도를 넘지 않도록 하기 위해.고농도의 질산염은 인간의 소화기관에서 아질산염으로 바뀔 수 있기 때문에 인간의 건강에 영향을 미친다.아질산염은 내장의 다른 화합물과 반응하여 발암성 물질로 보이는 니트로사민을 형성할 수 있다.농작물에는 과도한 비료를 뿌리면 고농도의 질산염이 함유될 수 있다.이것은 시금치나 [citation needed]상추와 같이 질산염 섭취량이 높은 작물에서 문제가 될 수 있습니다.

기존 테스트의 단점

기존 조직 검사는 분석을 위해 샘플을 실험실로 보내는 파괴적 검사입니다.상업적인 회사가 수행하는 실험실 테스트(토양 또는 조직 테스트)는 재배업자에게 비용이 듭니다.실험실 테스트는 완료하는 데 최소 일주일, 보통 2주가 소요됩니다.샘플을 건조시켜 실험실로 보내고 실험 테스트를 완료한 후 결과를 재배자에게 반환하는 데 시간이 걸립니다.즉,[1] 이상적인 조치가 취해질 때까지 재배자가 결과를 수신하지 못할 수 있습니다.현장에서 신속하게 수행할 수 있는 질소 조직 검사는 조직 검사를 훨씬 [1]더 유용하게 만듭니다.

실험실 조직 테스트의 또 다른 문제는 결과가 종종 해석하기 어렵다는 것이다.

비파괴조직검사

비파괴 조직 검사는 기존의 파괴 검사보다 장점이 있습니다.비파괴 조직 검사는 현장에서 쉽게 수행할 수 있으며 실험실 [1]검사보다 훨씬 빠른 결과를 얻을 수 있습니다.

질소 함량을 비파괴적으로 평가하기 위해 엽록소 함량을 평가할 수 있다.질소 함량은 엽록소 분자가 4개의 질소 원자를 포함하고 있기 때문에 엽록소 함량과 관련이 있다.

클로로필 함량계

클로로필 함유량계로 [citation needed]질소 결핍을 검출할 수 있다.미터기는 슬롯에 삽입된 잎을 통해 빛을 비추고 투과되는 빛의 양을 측정하여 엽록소의 함량을 결정합니다.

엽록소 측정기는 다른 측정 단위를 사용한다.예를 들어 Minolta가 "SPAD 단위"를 사용하는 반면 Force-A는 Dualex 단위, ADC는 클로로필 함량 지수를 사용합니다.모든 측정값이 기본적으로 동일하며 변환표를 사용할 [2]수 있습니다.

전통적인 흡수 기구들은 식물 과학자들에게 매우 인기가 있었고 넓은 잎 종들과 잘 어울린다는 것이 증명되었지만, 그것들은 한계가 있다.흡수계 제한:

  • 샘플은 측정 조리개를 완전히 덮어야 합니다.갭이 있으면 잘못된 판독값이 표시됩니다.
  • 측정된 샘플은 얇아야 하며, 따라서 측정된 빛이 완전히 흡수되지 않아야 합니다.
  • 샘플의 표면은 평평해야 합니다.
  • Kautsky 유도 효과는 동일한 부위에서 반복되는 측정을 제한합니다.
  • 중간 늑골과 정맥에 의해 측정값의 변동이 발생할 수 있습니다
  • 선형 상관관계는 300mg/[3]m2 이하로 제한된다.

따라서 흡수 기술에 적합하지 않은 샘플이 있습니다. 여기에는 작은 잎, 대부분의 CAM 식물, 침엽수 바늘, 과일, 바위 위의 조류, 이끼식물, 지의류 및 줄기와 페티올과 같은 식물 구조가 포함됩니다.이러한 샘플의 경우 엽록소 형광을 사용하여 엽록소 함량을 측정해야 합니다.
그의 과학논문 Gitelson(1999)은 "735nm에서의 클로로필 형광과 700nm에서 710nm의 파장 범위 사이의 비율은 (판정계수 r2, 0.95보다 큰) 클로로필 함량에 선형적으로 비례하는 것으로 밝혀졌으며, 따라서 이 비율은 클로로필의 정확한 지표로 사용될 수 있다"고 기술하고 있다.식물 [3]잎사귀에 들어있다.형광비 클로로필 함량계는 이 기술을 사용하여 더 어려운 샘플을 측정합니다.

형광비 클로로필 함량계에는 다음과 같은 장점이 있습니다.

  • 측정 조리개를 채울 필요가 없기 때문에 작은 샘플을 측정할 수 있습니다.
  • 최대 675mg/m의2 측정 가능(흡수기법으로는 300mg2/m만)
  • 솔잎, 꽃잎 등 곡면 측정 가능
  • 과일, 선인장 등 두꺼운 시료를 측정할 수 있다.
  • Kautsky 효과가 없으므로 동일한 부위에서 여러 측정을 수행할 수 있습니다.
  • 잎맥과 갈비뼈 중간을 피할 수 있으므로 보다 일관된 측정값 제공

엽록소 형광을 측정함으로써 식물 생태생리학이 연구된다.엽록소 형광계는 식물 연구자들이 식물의 스트레스를 평가하기 위해 사용한다.

클로로필 형광 측정

클로로필 형광계는 광계 II(PSII)의 가변 형광을 측정하도록 설계되어 있습니다.대부분의 식물 스트레스 유형에서 이 가변 형광을 사용하여 식물 스트레스 수준을 측정할 수 있습니다.가장 일반적으로 사용되는 프로토콜은 다음과 같다: Fv/Fm, 어두운 적응 프로토콜, Y(II) 또는 δF/Fm'는 정상 상태의 광합성 중에 사용되는 빛 적응 테스트, 그리고 다양한 OJIP, 어두운 적응 프로토콜, 다양한 생각의 학파를 따른다.더 긴 형광 담금질 프로토콜도 발전소 응력 측정에 사용할 수 있지만 측정에 필요한 시간이 매우 길기 때문에 작은 발전소 집단만 테스트할 수 있다.NPQ 또는 비광화학 담금질은 이러한 담금질 매개변수 중 가장 널리 사용되는 것이지만, 다른 매개변수 및 기타 담금질 프로토콜도 사용됩니다.

형광에 기반한 또 다른 테스트 프로토콜은 OJIP 테스트입니다.이 방법은 어둡게 적응한 잎을 조명할 때 방출되는 형광의 증가를 분석합니다.조명의 첫 번째 초 동안 형광의 상승은 O, J, I 및 P 단계라고 불리는 중간 피크가 있는 곡선을 따릅니다.또한, K 단계는 N-결손과 같은 특정 유형의 응력 동안 나타납니다.연구에 따르면 K 단계는 N-스트레스를 [4]측정할 수 있습니다.

「 」를 참조해 주세요.

레퍼런스

  1. ^ a b c "5 Petiole Sap Analysis - A Ouick Tissue Test for Nitrogen in Potatoes". landresources.montana.edu. Archived from the original on 2001-06-01.
  2. ^ Zhu, Juanjuan, Tremblay, Nicholas, and Lang, Yinli (2011). "Comparing SPAD and atLEAF values for chlorophyll assessment in crop species". Canadian Journal of Soil Science. 92 (4): 645–648. doi:10.4141/cjss2011-100.{{cite journal}}: CS1 maint: 여러 이름: 작성자 목록(링크)
  3. ^ a b Gitelson, Anatoly A; Buschmann, Claus; Lichtenthaler, Hartmut K (1999). "The Chlorophyll Fluorescence Ratio F735/F700 as an Accurate Measure of the Chlorophyll Content in Plants". Remote Sensing of Environment. 69 (3): 296. Bibcode:1999RSEnv..69..296G. doi:10.1016/S0034-4257(99)00023-1.
  4. ^ Strasser, R. J. "형광 과도 클로로필 분석" [1]