리독스 그라데이션

Redox gradient
환경에서의 일반적인 리독스 반응 묘사. 장과[1] 고니가 수치로 각색한 것이다.[2] 레독스 쌍은 산화제(전자 수용기)와 함께 적색으로, 환원기(전자 도너레이터)는 흑색으로 표시된다.
에너지에 기반한 해양 퇴적물에서 리독스 반응의 상대적 선호도. 화살표의 시작점은 반전지 반응과 관련된 에너지를 나타낸다. 화살표의 길이는 높은 ΔG가 더 에너지적으로 유리한 반응에 대한 Gibb의 자유 에너지(ΔG)[3]의 추정치를 나타낸다(Libes, 2011).

redox gradientredox 잠재력에 따라 정렬된 일련의 redox-oxidation(redox) 반응이다.[4][5] redox 사다리에는 redox 쌍에서 얻은 자유 에너지를 바탕으로 redox 반응이 발생하는 순서를 표시한다.[4][5][6] 이러한 리독스 그라데이션은 미생물 과정, 환경의 화학적 구성, 산화적 전위의 차이로 인해 공간적으로나 일시적으로 모두 형성된다.[5][4] 리독스 그라데이션이 존재하는 일반적인 환경은 해안 습지, 호수, 오염 플럼, 토양이다.[1][4][5][6]

지구는 지표면에 산화 환경이 있고 지표면 아래의 조건들이 점점 감소하는 지구적 리독스 구배를 가지고 있다.[4] 리독스 그라데이션은 일반적으로 매크로 수준에서 이해되지만, 마이크로 스케일에서 이기종 환경에서 리독스 반응을 특성화하려면 추가 연구와 보다 정교한 측정 기법이 필요하다.[5][1][7][6]

리독스 조건 측정

리독스 조건은 전자전자 공여자에서 전자 수용기로 전달되는 경향을 나타내는 리독스 전위(Eh)에 따라 전압 단위로 측정된다. E는h 반반응과 네른스트 방정식을 사용하여 계산할 수 있다.[1] 0의 E는h 표준 수소 전극 H+/H의2,[8] 리독스 부부를 나타내며, 양극h E는 산화 환경(전자가 수용됨), 음극 E는h 감소 환경(전자가 기증됨)을 나타낸다.[1] 리독스 구배에서 가장 정력적으로 유리한 화학반응은 리독스 사다리의 "상단"에서, 가장 정력적으로 유리한 반응은 사다리의 "하단"에서 일어난다.[1]

E는h 현장에서 시료를 채취하고 실험실에서 분석을 수행하거나, 전극을 환경에 삽입해 현장 측정으로 채취할 수 있다.[6][5][1] 리독스 전위를 측정하기 위한 대표적인 환경은 물, 토양, 퇴적물 체내에 있으며, 이 모든 환경은 높은 수준의 이질성을 나타낼 수 있다.[5][1] 많은 수의 샘플을 수집하면 높은 공간 분해능을 얻을 수 있지만 샘플은 단수 a 스냅샷만 제때 반영하기 때문에 시간 분해능이 낮은 비용을 들일 수 있다.[8][1][5] 현장 모니터링은 연속적인 실시간 측정을 수집하여 시간적 분해능이 높을 수 있지만 전극이 고정된 위치에 있기 때문에 공간 분해능이 낮다.[1][5]

레독스 성질은 유도-극화 영상의 활용을 통해 높은 공간적·시간적 분해능으로도 추적할 수 있지만, 양극화에 대한 레독스 종의 기여를 충분히 이해하기 위한 추가 연구가 필요하다.[6]

환경조건

레독스 그라데이션은 특히 토양과 수생 환경에서 공간과 시간의 함수로서 환경에 흔히 발견된다.[9][8][8][6] 구배는 산소 가용성, 토양수문학, 존재하는 화학종, 미생물 과정 등 다양한 생리화학적 특성에 의해 발생한다.[1][4][9][8] 일반적으로 리독스 경사로 특징지어지는 특정 환경에는 수분이 많은 토양, 습지,[8] 오염 플럼,[9][4] 해양 피질헤미펠러성 퇴적물이 포함된다.[4]

산화부터 환원( 괄호 안에 반응을 수행하는 기관)까지 환경에서 발생하는 공통 반응의 목록은 다음과 같다.[1]

  1. 유산소 호흡(에로브스: 유산소 유기체)
  2. 디니트리피케이션(디니트리피어: 디니트리피케이션 박테리아)
  3. 망간 환원(망간 환원기)
  4. 철분감소(철분해제:철분해세균)
  5. 황산염 환원(황산 환원기: 황 감소세균)
  6. 메타노제시스(메타노제스)

아쿠아틱 환경

리독스 그라데이션은 물기둥과 그 퇴적물에 형성된다. 물기둥 내의 다양한 산소 수준(독성, 아산화, 저산소)은 레독스 화학작용을 변화시키며, 어떤 레독스 반응이 일어날 수 있는가를 변화시킨다.[10] 산소 최소 구역의 개발은 또한 리독스 구배 형성에 기여한다.

벤트식 침전물은 광물 구성, 유기물 가용성, 구조 및 흡착 역학의 변화에 의해 생성된 리독스 그라데이션이 나타난다.[5] 표면 아래 퇴적물을 통한 용해 전자의 제한된 이동은 다양한 모공 크기의 퇴적물과 결합되어 벤트릭 퇴적물에서 상당한 이질성을 생성한다.[5] 침전물의 산소 가용성은 어떤 미생물 호흡 경로가 발생할 수 있는지 결정하며, 깊이와 함께 산소 가용성이 감소함에 따라 리독스 공정이 수직으로 층화된다.[5]

지상 환경

토양 E도h 크게 수문학적 조건의 함수다.[1][8][6] 홍수가 나면 포화토양이 난독에서 무옥시로 옮겨갈 수 있어 혐기성 미생물 공정이 지배하면서 환경이 축소된다.[1][8] 게다가, 작은 양극성 핫스팟은 토양 모공 공간 내에서 발달하여 감소 조건을 만들어낼 수 있다.[6] 시간이 흐르면 물이 빠지고 토양이 마르면 토양의 시작h E가 복원될 수 있다.[1][8] 상승 지하수에 의해 형성된 레독스 경사가 있는 토양은 글레솔로 분류되며, 정체된 물에 의해 경사가 형성된 토양은 리독솔플라노솔로 분류된다.

토양 E는h 일반적으로 -300에서 +900mV까지 다양하다.[8] 아래 표에는 다양한 토양 조건에 대한 대표적인 Eh 값이 요약되어 있다.[1][8]

토양 조건 일반 E 범위h(mV)

[1][8]

물에 잠김 Eh < +250
공기 주입 - 적당히 감소 +100 < Eh < +400
공기 주입 - 감소됨 -100 < Eh < +100 >
공기 주입 - 고도로 감소 -300 < Eh < -100>
배양된 +300 < Eh > +500

식물이 견딜 수 있는 일반적으로 허용되는 Eh 한계는 +300 < Eh > +700 mV이다.[8] 300 mV는 습지 토양에서 에어로빅과 혐기성 조건을 구분하는 경계 값이다.[1] 레독스 전위(Eh)도 pH와 밀접하게 연관되어 있으며, 둘 다 토양-식물-미생물계통의 기능에 상당한 영향을 미친다.[1][8] 토양에서 전자의 주요 공급원은 유기 물질이다.[8] 유기물은 분해하면서 산소를 소비하여 토양 조건을 줄이고 E를h 낮추는 결과를 낳는다.[8]

미생물의 역할

Redox 그라데이션은 자원 가용성과 생리화학 조건(pH, 염도, 온도)을 기반으로 형성되며 미생물의 층화된 공동체를 지원한다.[1][5][9][8][7] 미생물은 주변의 조건에 따라 서로 다른 호흡 과정(ethanogenesis, 황산염 감소 등)을 수행하고 환경에 존재하는 리독스 그라데이션(redox gradients)을 더욱 증폭시킨다.[9][1][8] 그러나 미생물의 분포는 열역학(redox ladder)만으로 판단할 수 없고 생태학적, 생리학적 요인에 의해서도 영향을 받는다.[6][5]

리독스 경사는 수생 및 육지 환경 모두에서 오염 물질 플럼을 따라 형성되며, 오염 물질 농도와 오염 물질이 관련 화학 공정 및 미생물 집단에 미치는 영향의 함수다.[1][9] 리독스 구배를 따른 유기 오염물질 분해율이 가장 높은 것은 난독성-난독성 인터페이스에서 찾을 수 있다.[1] 지하수에서는 이 난독성 환경을 모세관 가장자리라고 하는데, 물탁자가 흙과 만나 빈 모공을 채우는 곳이다. 이 전환지대는 난독성과 무옥시성을 모두 갖기 때문에 전자수용체와 기증자가 풍부하고 미생물 활성도가 높아 오염물질인 생분해율이 가장 높다.[1][9]

벤트식 퇴적물은 본질적으로 이질적이어서 결과적으로 리독스 그라데이션이 나타난다.[5] 이러한 이질성 때문에 화학종 감소와 산화작용의 구배는 틈새 미생물 집단의 전자전달 요구를 지원할 수 있을 정도로 항상 중복되는 것은 아니다.[5] 케이블 박테리아는 공급 부족과 과잉 전자의 이러한 영역을 연결하여 그렇지 않으면 사용할 수 없는 리독스 반응에 대한 전자 전송을 완료하는 데 도움을 주는 황화 산화 박테리아로 특징지어져 왔다.[5]

갯벌, 빙하, 열수 분출구, 수생 환경 하단에서 발견되는 바이오필름도 리독스 그라데이션이 나타난다.[5] 종종 금속이나 황산염 감소 박테리아와 같은 미생물 집단은 공간적 물리화학적 변동성의 함수로서 마이크로미터 척도의 레독스 그라데이션(redox gradient)을 생산한다.[5]

SMTZ의 미생물 프로세스에 대한 적용 범위는 황산염-메탄 전환 구역을 참조하십시오.

참고 항목

참조

  1. ^ a b c d e f g h i j k l m n o p q r s t u v w x Zhang, Zengyu; Furman, Alex (2021). "Soil redox dynamics under dynamic hydrologic regimes - A review". Science of the Total Environment. 763: 143026. Bibcode:2021ScTEn.763n3026Z. doi:10.1016/j.scitotenv.2020.143026. ISSN 0048-9697. PMID 33143917. S2CID 226249448.
  2. ^ Gorny, J.; Billon, G.; Lesven, L.; Dumoulin, D.; Madé, B.; Noiriel, C. (2015). "Arsenic behavior in river sediments under redox gradient: a review". The Science of the Total Environment. 505: 423–434. doi:10.1016/j.scitotenv.2014.10.011. PMID 25461044. S2CID 24877798.
  3. ^ Libes, Susan (2009). Introduction to marine biogeochemistry. Amsterdam Boston: Elsevier/Academic Press. ISBN 978-0-08-091664-4. OCLC 643573176.
  4. ^ a b c d e f g h Borch, Thomas; Kretzschmar, Ruben; Kappler, Andreas; Cappellen, Philippe Van; Ginder-Vogel, Matthew; Voegelin, Andreas; Campbell, Kate (2009). "Biogeochemical Redox Processes and their Impact on Contaminant Dynamics". Environmental Science & Technology. American Chemical Society (ACS). 44 (1): 15–23. doi:10.1021/es9026248. ISSN 0013-936X. PMID 20000681.
  5. ^ a b c d e f g h i j k l m n o p q r s Lau, Maximilian Peter; Niederdorfer, Robert; Sepulveda-Jauregui, Armando; Hupfer, Michael (2018). "Synthesizing redox biogeochemistry at aquatic interfaces". Limnologica. 68: 59–70. doi:10.1016/j.limno.2017.08.001.
  6. ^ a b c d e f g h i Peiffer, S.; Kappler, A.; Haderlein, S. B.; Schmidt, C.; Byrne, J. M.; Kleindienst, S.; Vogt, C.; Richnow, H. H.; Obst, M.; Angenent, L. T.; Bryce, C. (2021). "A biogeochemical–hydrological framework for the role of redox-active compounds in aquatic systems". Nature Geoscience. 14 (5): 264–272. doi:10.1038/s41561-021-00742-z. ISSN 1752-0894.
  7. ^ a b Zakem, Emily J.; Polz, Martin F.; Follows, Michael J. (2020). "Redox-informed models of global biogeochemical cycles". Nature Communications. 11 (1): 5680. doi:10.1038/s41467-020-19454-w. ISSN 2041-1723. PMC 7656242.
  8. ^ a b c d e f g h i j k l m n o p q r Husson, Olivier (2013). "Redox potential (Eh) and pH as drivers of soil/plant/microorganism systems: a transdisciplinary overview pointing to integrative opportunities for agronomy". Plant and Soil. 362 (1–2): 389–417. doi:10.1007/s11104-012-1429-7. ISSN 0032-079X. S2CID 17059599.
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  10. ^ Rue, Eden L.; Smith, Geoffrey J.; Cutter, Gregory A.; Bruland, Kenneth W. (1997). "The response of trace element redox couples to suboxic conditions in the water column". Deep Sea Research Part I: Oceanographic Research Papers. 44 (1): 113–134. doi:10.1016/S0967-0637(96)00088-X.