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칼리포라 구토증

Calliphora vomitoria
칼리포라 구토증
Calliphoridae - Calliphora vomitoria.JPG
여성
과학적 분류 edit
킹덤: 애니멀리아
망울: 절지 동물문
클래스: 살충제
순서: 디프테라
패밀리: 칼리포라과
속: 칼리포라
종:
구토증
이항식 이름
칼리포라 구토증
동의어[1][2]
  • 칼리포라 루브리프론 타운센드
  • 무스카 옵스쿠레나 에슈콜츠
  • 무스카토미토리아 리나에우스

칼리포라 토미토리아([3][4]Calliphora vomitoria)는 파리일종으로 칼리포라과에 속하는 종이다.칼리포라 토미토리아(Calliphora vomitoria)는 칼리포라(Calliphora) 속종일종이다.그것은 유럽, 아메리카, 아프리카를 포함한 많은 대륙에서 흔하다.그들은 집파리 크기의 거의 두 배인 꽤 큰 파리들이다.그들은 반짝반짝 빛나는 푸른 몸으로 쉽게 알아볼 수 있다.

성충 파리가 과즙을 먹고사는 반면 암컷 파리는 알을 썩는 시체에 맡기는 등 중요한 법의학적 곤충으로 자리 잡는다.

설명

남성 C. 토미토리아 측면 클로즈업

파란색 병파리들은 전형적으로집파리 크기의 거의 두 배인 10–14 mm (3/89/16인치) 길이.머리와 흉부는 칙칙한 회백색이고, 뒷머리에는 긴 황색주황색 세태가 있다.[5][6]복부는 밝은 금속성 청색으로 검은 자국이 있다.그것의 몸과 다리는 검은 털로 덮여 있다.그것은 짧고 몽둥이가 달린 더듬이와 다리당 4개의 타르시를 가지고 있다.눈은 빨갛고 날개는 투명하다.다리와 더듬이가 검고 분홍색이다.가슴은 밝은 보라색이며 다른 파리들로부터 보호하기 위한 뾰족탑이 있다.[7][8]C. 토미토리아를 칼리포라비시나와 같은 다른 밀접하게 연관된 종과 구별하기 위해 C. 토미토리아는 눈 아래의 오렌지색 털인 특징적인 "오렌지 볼"로 식별할 수 있다.덧붙여 C. 토미토리아에는 어두운 염기성(날개의 밑부분)이 있는 반면 C.비시나는 노란 염기성 염기성이 있다.이 모든 특징들은 간단한 사진을 통해 확인할 수 있다.[9][10]

분포 및 서식지

칼리포라 구토증은 유럽 대부분, 알래스카, 그린란드, 멕시코 남부, 미국, 그리고 남아프리카를 포함한 전 세계에서 발견될 수 있다.[11][12]루실리아 세리카타, 흐리소미야 알비스와 같은 다른 칼리포라과 종에 비해 높은 고도를 선호한다.그들은 이 지역에서 발견된 가장 풍부한 파리들 중 하나이다.[13]

온도는 분포에 큰 영향을 미친다.대부분의 파리가 그렇듯이 C. 토미토리아는 봄과 여름에 가장 많이 발견되고, 가을과 겨울에는 가장 적게 발견된다.[14]선호되는 C. 토미토리아 서식지는 계절에 따라 다르다.겨울과 여름 동안, 그것들은 대부분 시골 지역(그리고 덜한 정도까지 이주민 지역에서 발견될 수 있다.봄과 가을 동안, 그것들은 다 자란 지역에서 발견된다.[15]

라이프 사이클

파리의 등쪽 클로즈업

푸른 병 파리들은 알, 애벌레, 번데기, 그리고 성인의 완전한 주기를 가지고 있다.개발은 보통 2주 정도 걸린다.[16]유충은 단백질이 풍부하고 이론적으로 사료로 사용할 수 있다.암컷 푸른 병 파리 한 마리가 먹이를 주는 곳에 알을 낳는데, 주로 썩어가는 고기, 쓰레기, 배설물 속에 있다.흔히 구더기라고 불리는 창백한 흰색의 유충은 곧 알에서 부화하여 즉시 죽은 동물의 사체와 그들이 부화한 부패 물질을 먹기 시작한다.[17]며칠 동안 먹이를 먹었더니 그들은 완전히 자란다.그 때 그들은 흙이나 비슷한 물질로 파고들어 질긴 갈색 고치에 번데기가 되는 더 건조한 곳으로 기어나간다.번데기 단계는 발달 주기의 가장 긴 단계다.[14]

2, 3주가 지나면 어른들이 번데기 단계에서 나와 짝짓기를 하며 다시 순환을 시작한다.성인의 형태로 보낸 정상적인 지속시간은 평균 10~14일이지만, 추운 날씨에는 번데기와 성인은 높은 기온이 되살아날 때까지 동면할 수 있다.[8]

변태와 세포사망

변태를 겪으려면 세포사멸과 같은 파리에게 엄청난 변화가 필요하다.일반적으로 프로그램된 세포사멸과 세포사멸은 같다고 믿지만, 항상 그렇지는 않다.애벌레 단계 중 변태 초기에는 칼리포라 토미토리아 유충의 침샘세포가 스스로 프로그램되어 파괴된다.충분한 먹이를 준 후, 유충들이 쉬게 되고 초기 단백질 합성 단계가 급증하여 많은 양의 단백질을 생산하게 된다.이것은 1일부터 약 8일까지 발생한다.그 후 9일째 되는 날 침샘세포의 세포사멸이 일어난다.이러한 종합과 파괴의패턴은 DNA변형이 보이지 않고 세포가 퇴색하고 부풀어 오르는 것이 나타나므로(탈구증의 경우 응축하고 수축하는 것에 비해)사멸과 혼동해서는 안 된다.대신 선택적 표현과 DNA 합성은 (침샘 세포의) 프로그램된 세포 죽음을 뒷받침하는 것으로 보인다.[18]

C. 토미토리아와 가까운 친척인 칼리포라비시나

다이어트

다른 잠자리들과 마찬가지로 C. 토미토리아도 인간을 포함한 동물 유적을 식민지로 만든다.성인 C. 토미토리아는 과즙을 먹고사는 반면, 유충은 그들이 자라는 매개체인 시체를 먹고 산다.다만 가공된 기판(염료, 양생, 흡연 등을 통해 유통기한과 맛을 높여 사람이 섭취하도록 변형한 식품)을 먹이면 가공되지 않은 기판류(원래 수정되지 않은 간 등)보다 훨씬 좋은 성장을 이룬 것으로 나타났다.서로 다른 기질들이 성장에 큰 영향을 끼쳤기 때문에 C. 토미토리아는 가공 기질(예를 들어 소염육)을 가장 잘 활용하는 전문의로 가장 잘 특징지어진다.그것의 가까운 친척인 칼리포라 비시나는 같은 성장률을 가진 혼합 기판을 활용할 수 있는 일반론자다.[19]과밀화의 경우 C.토미토리아경쟁이 발달속도를 높여 보상을 받아 유충과 성충이 작아진다.이것은 신체의 다른 부분이 다른 비율로 자라기 때문에 법의학에서 합병증을 가지고 있다.[20]게다가, 파리 유충들은 묻혀 있는 유골들조차 식민지화할 수 있는 것으로 밝혀졌다.표면과 매장된 유충 사이의 성장률은 비슷한 속도로 증가했다.[21]보통, 이 파리들은 죽은 직후 신선한 시체들의 상처 주위에 알을 낳는다.번데기 직전, 카리온을 떠난 파리 애벌레는 번데기 위해 흙 속으로 파고들 수 있다.그리고 나서, 어른 파리들이 나타난다.[14]썩어가는 사체에서는 칼리포리대 파리가 지배하는 것으로 나타났는데, 특히 C.토미토리아를 지배하고 있는 것으로 밝혀졌다.봄과 가을 모두에서 C. 토미토리아는 사체에서 발견되는 1차 종이다.C. 토미토리아는 루실리아 시저와 같은 다른 냉혈동물 종과 사체를 공유하는 경우도 있다.[22]

C. 토미토리아는 스컹크 양배추의 알려진 수분 매개체다.

블루보틀 파리 어른들은 과즙을 먹고 사는데, 그들은 꽃의 꽃가루는 꽃가루 매개자들이다.특히 고기 썩는 냄새에 적응한 꽃처럼 냄새가 강한 꽃에 끌린다.파리에 의해 수분되는 식물은 스컹크 양배추(Symplocarpus foetidus), 미국산 파와파우(Asimina triloba), 죽은 말 아룸(Helicodiceros muscivorus), 골든로드, 당근과의 몇몇 종을 포함한다.[23]이 곤충들은 가능한 식량을 더 효율적으로 탐지하기 위해 떼를 지어 날아다니는 경향이 있다.한 마리의 파리가 먹이를 발견하면 페로몬을 뿌리고, 이것은 다른 파리들에게 식사를 알려준다.[8]

부모양육

C. 토미토리아와 같은 송풍파리는 대부분의 장소에 드물게 알을 낳기 때문에 이 시체들은 다양한 종의 알을 낳게 된다.그 결과 높은 애벌레 밀도가 발생한다.실제로 현장 주변에 다른 개인들이 많이 있을 때 임신한 암컷들은 난립률을 증가시키게 되는데(이것은 오프스프링의 수를 증가시킨다) 접촉과 화학적 자극에 의해 유발될 가능성이 높다.[24]그러나 많은 수의 유충은 결국 각 개인에게 유익하게 된다.유충은 사체의 조직을 분해하는 효소의 분비에 의해 먹이를 먹이기 때문에 이러한 분비물을 대량으로 집적시킴으로써 더 효과적이어서 먹이가 더 쉬워진다.또한, 큰 집합은 열을 발생시키고 유충을 따뜻하게 유지하는데 도움을 준다. 파리는 일반적으로 따뜻한 온도를 선호하기 때문이다.개체수가 많은 한 가지 문제점은 주변 유충이 먹이에서 제외될 수 있고, 발달 주기가 끝날 때쯤에는 영양 부족과 과소화 현상이 나타나기 때문에 경쟁이 여전히 하나의 요인이라는 점이다.[20]

생리학

야간비행

C. 토미토리아는 현존하는 시체의 유무와 관계없이 거의 밤에 날지 않는다는 의견이 제기되어 왔다.이는 이들이 밤중에 시신에 알을 맡기지 않는다는 것을 시사한다.그 후 법의학에 적용하게 된 은 난소의 힘든 시간은 난소를 낮으로 좁혀서 결정할 수 있다는 생각에서 비롯된다.[25]

이황화 교량으로 연결된 인슐린 체인 A 및 B

호르몬

칼리포라 종의 뇌의 중앙 신경 분비 세포(MNC)에는 인슐린을 닮은 펩타이드 호르몬이 들어 있다.이것은 연구원들이 인슐린과 유사한 펩타이드들을 소 인슐린의 항체로 결합시킬 수 있을 때 증명되었다.이것은 곤충 호르몬이 구조적으로 유명한 포유류 호르몬[20] 유사할 수 있다는 것을 보여준다. 그리고 그것은 인슐린이나 폴리펩타이드와 같은 물질이 대사 조절 호르몬이 되기 전에 중추신경계 조절 호르몬 역할을 할 가능성을 제기한다.[26][27]

접착기관

제5차 타르살 구획의 말단부에는 풀빌리(pulvilli)가 들어 있는데, 풀빌리(pulvilli)는 곤충의 쿠션처럼 털이 많은 발과 두 발톱의 밑부분에 위치한 많은 절지동물이다.복측면에서 뿜어져 나오는 털은 이들 파리의 밀착력을 위한 열쇠다.게다가, 그들은 떨어지는 것을 막기 위해 불규칙한 표면을 붙드는 것을 돕는 큰 발톱을 가지고 있다.C. 토미토리아 역시 다른 블로파리와 마찬가지로 비휘발성 지질을 추가 접착에 중요한 털을 통해 분비한다.발톱과 털의 물리적인 그립감과 지질 분비물에 의해 생기는 표면 장력이 결합되어 매끄러운 표면을 쉽게 고수할 수 있다.[28][29]

인간과의 상호작용

포렌식

이 파리들은 법의학에서 가장 중요한 곤충 증거들 중 하나인데, 특히 식민지화 시간(TOC)과 사후 모템 간격(PMI)을 얻기 위한 것이다.[14] 칼리포라 종은 온대지방에서 온대지방에서 가장 중요하다. 온대지방에서는 온도에 따른 성장률이 높기 때문이다.온도를 알면 알을 낳은 이후의 시간을 추정할 수 있다.또한 C. 토미토리아는 많은 종보다 성장에 대한 문턱 온도가 높다. 마찬가지로 많은 지역에 존재한다.그러나 추운 온도에서 생존할 수 있는 종은 거의 없기 때문에 그들의 사용에는 한계가 있다; 대부분은 대략 2 °C(36 °F)보다 따뜻하지 않으면 개발을 계속할 수 없다.[30]

사체의 분해는 분해 단계, 신선 단계, 비대해진 단계, 활성 부패 단계, 심화 부패 단계, 잔류 단계 등 6단계로 나눌 수 있다.성인 C. 토미토리아는 부풀어 오른 단계에서 먼저 사체에 나타나기 시작하며, 이후 1~3일이 지나면 유충이 뒤따른다.활성 부패 단계에서는 송어새 유충 개체수가 최고조에 이른다.[31]

매장된 시신에서는 C. 토미토리아 식별을 통해 매장 이후 시간 정보와 시신을 보관한 방법(매장 전 지반 위/아래)도 수집할 수 있다.[21]그러나 이들 파리에 대한 연구는 생물의 이력이 각 지역에 따라 다를 수 있기 때문에 곤충학자가 쉽게 구할 수 있는 영역으로 한정된다.이러한 삶의 이력은 기온과 고도 등 기후의 차이로 인해 미묘한 차이가 있다.따라서 이러한 제한사항은 식민지화(TOC)와 사후관리(PMI)의 적절한 시간이 설정될 수 있도록 고려되어야 한다.[14]

인간의 목에 걸린 마이아시스

이 블루보틀 파리는 또한 사람이나 동물의 마이아시스(살아있는 개인에게 기생하는 기생충)를 일으킬 수 있다.법의학자들은 때때로 방치된 아이의 부검과 같은 그들의 작업 과정에서 그것을 확인한다.[32][33]

식별

C. 토미토리아만이 카리온에 존재하는 종은 아니기 때문에, 서로 다른 발달 주기를 가지고 있기 때문에 사망 시간에 대한 잘못된 추정을 피하기 위해서는 올바른 종을 식별하는 과정이 필요하다.과거에는 종을 구별하기 위해 단순한 형태론적 차이가 이용되었다.하지만, 범죄 현장에서는 곤충 종의 보존이 좋은 것과는 거리가 먼, 이러한 장소들이 이상적이지 않은 경우가 더 많기 때문에 매우 어렵다.종을 가장 잘 구별할 수 있는 방법은 DNA, 미토콘드리아 DNA, COI 유전자다.제한 효소와 함께 사용되는 COI 유전자는 블로플라이 종을 정확하게 구분하는 비교적 빠르고 간단한 방법인 것으로 나타났다.[34]

사후 모템 간격

PMI(Post Mortem interval, PMI)는 죽음과 시체의 발견 사이의 시간이다.시신에 알을 낳은 최초의 종 중 하나이기 때문에 PMI 추정에 있어 구토증은 중요하다.PMI를 추정하는 방법에는 두 가지가 있다. 하나는 유충을 죽인 다음 유충의 길이와 온도를 표준화된 데이터에 있는 유충과 비교하는 것이다.또 다른 PMI 계산 방법은 유충이 특정 발달 단계에 도달하기 위해 필요한 누적 도시간/일(ADH/D)을 계산하는 것이다.후자의 방법은 PMI를 추정하는 더 널리 받아들여지는 방법이다.[20]

법적 중요성

가장 풍부한 파리 중 하나이자 사건(캐리온)의 일등성향으로 법적 수사에 매우 유용하다.다른 칼리포라 종들은, 인간의 기생충만큼 중요하지만, 단순히 덜 자주 발견되기 때문에 그렇게 중요한 것은 아니다.그러나 지역마다 다른 종의 파리를 유인하기 때문에 플라이 유통에 대한 명확한 공감대가 형성되어 있지 않으며, 따라서 이러한 중요한 법의학적 자원의 유무를 확인하기 위해 현지 조사를 실시해야 한다.[15]

농작물의 수분작용

칼리포라 토미토리아는 때때로 다른 농작물의 꽃가루 매개자 역할을 할 수 있으며, 특히 강한 향의 작물들과 잘 어울린다.파리들은 이 농작물의 과즙을 먹고 난 다음 날 때 씨앗을 계속 뿌린다.이러한 종자 분산 이벤트는 콜리플라워의 씨앗 유입으로 이어질 수 있다.[35]

갤러리

참조

  1. ^ "Calliphora vomitoria". Integrated Taxonomic Information System. Retrieved May 31, 2008.
  2. ^ Kurahshi, Hiromu (May 28, 2007). "109. Family CALLIPHORIDAE". Australasian/Oceanian Diptera Catalog. Hawaii Biological Survey. Retrieved May 31, 2008.
  3. ^ "Species Calliphora vomitoria - Blue Bottle Fly - BugGuide.Net". bugguide.net. Retrieved 10 November 2019.
  4. ^ "Calliphora vomitoria". National Biodiversity Network. Retrieved 10 November 2019.
  5. ^ Whitworth, Terry (2006). "Keys to genera and species of blow flies (Diptera: Calliphoridae) of America north of Mexico" (PDF). Proceedings of the Entomological Society of Washington. 108 (3): 689–725.
  6. ^ 크리즈토프 스즈필라:유럽 및 지중해 블래시(Diptera, Calliphorae)의 법의학적 중요성에 대한 식별을 위한 키. 어른파리
  7. ^ 장 앙리 파브르, 1907 - 라 무슈 꼭지점 등 보라색
  8. ^ a b c Michael Chinery, Forekes de France et d'Europe cocidentale, 파리, Flammarion, 2012, (ISBN 978-2-0812-8823-2) 페이지 214-215
  9. ^ "Calliphora vomitoria NatureSpot". www.naturespot.org.uk. Retrieved 2020-02-24.
  10. ^ "Calliphora vicina NatureSpot". www.naturespot.org.uk. Retrieved 2020-02-24.
  11. ^ 파우나 유로페아
  12. ^ 생명의 칼랄로그
  13. ^ Baz, Arturo; Cifrián, Blanca; Díaz-äranda, Luisa María; Martín-Vega, Daniel (2007-01-01). "The distribution of adult blow-flies (Diptera: Calliphoridae) along an altitudinal gradient in Central Spain". Annales de la Société Entomologique de France. Nouvelle Série. 43 (3): 289–296. doi:10.1080/00379271.2007.10697524. ISSN 0037-9271.
  14. ^ a b c d e Ames, C.; Turner, B. (2003). "Low temperature episodes in development of blowflies: implications for postmortem interval estimation". Medical and Veterinary Entomology. 17 (2): 178–186. doi:10.1046/j.1365-2915.2003.00421.x. ISSN 1365-2915. PMID 12823835. S2CID 10805033.
  15. ^ a b Brundage, Adrienne; Bros, Shannon; Honda, Jeffrey Y. (2011-10-10). "Seasonal and habitat abundance and distribution of some forensically important blow flies (Diptera: Calliphoridae) in Central California". Forensic Science International. 212 (1): 115–120. doi:10.1016/j.forsciint.2011.05.023. ISSN 0379-0738. PMID 21683536.
  16. ^ "Calliphora vomitoria (Linnaeus, 1758) Insects as Food and Feed". e-insects.wageningenacademic.com. Retrieved 2020-01-15.
  17. ^ 프로그레시브 해충 방제
  18. ^ Bowen, I. D.; Morgan, S. M.; Mullarkey, K. (1993-01-01). "Cell death in the salivary glands of metamorphosing calliphora vomitoria". Cell Biology International. 17 (1): 13–34. doi:10.1006/cbir.1993.1002. ISSN 1065-6995. PMID 8495226. S2CID 23977561.
  19. ^ Niederegger, Senta; Wartenberg, Nelly; Spiess, Roland; Mall, Gita (2013-08-01). "Influence of food substrates on the development of the blowflies Calliphora vicina and Calliphora vomitoria (Diptera, Calliphoridae)". Parasitology Research. 112 (8): 2847–2853. doi:10.1007/s00436-013-3456-6. ISSN 1432-1955. PMID 23681195. S2CID 16079574.
  20. ^ a b c d Ireland, Sarah; Turner, Bryan (2006-06-02). "The effects of larval crowding and food type on the size and development of the blowfly, Calliphora vomitoria". Forensic Science International. 159 (2): 175–181. doi:10.1016/j.forsciint.2005.07.018. ISSN 0379-0738. PMID 16221536.
  21. ^ a b Gunn, Alan; Bird, Jerry (2011-04-15). "The ability of the blowflies Calliphora vomitoria (Linnaeus), Calliphora vicina (Rob-Desvoidy) and Lucilia sericata (Meigen) (Diptera: Calliphoridae) and the muscid flies Muscina stabulans (Fallén) and Muscina prolapsa (Harris) (Diptera: Muscidae) to colonise buried remains". Forensic Science International. 207 (1): 198–204. doi:10.1016/j.forsciint.2010.10.008. ISSN 0379-0738. PMID 21071161.
  22. ^ Jarmusz, Mateusz; Bajerlein, Daria (2019-07-01). "Decomposition of hanging pig carcasses in a forest habitat of Poland". Forensic Science International. 300: 32–42. doi:10.1016/j.forsciint.2019.04.013. ISSN 0379-0738. PMID 31075565.
  23. ^ "Blue bottle fly data - Encyclopedia of Life". eol.org. Retrieved 2020-02-17.
  24. ^ Barton Browne, L.; Bartell, R. J.; Shorey, H. H. (1969-06-01). "Pheromone-mediated behaviour leading to group oviposition in the blowfly Lucilia cuprina". Journal of Insect Physiology. 15 (6): 1003–1014. doi:10.1016/0022-1910(69)90140-1. ISSN 0022-1910.
  25. ^ Wooldridge, J.; Scrase, L.; Wall, R. (2007-10-25). "Flight activity of the blowflies, Calliphora vomitoria and Lucilia sericata, in the dark". Forensic Science International. 172 (2): 94–97. doi:10.1016/j.forsciint.2006.12.011. ISSN 0379-0738. PMID 17267152.
  26. ^ Duve, H.; Thorpe, A.; Neville, R.; Lazarus, N. R. (1981-09-01). "Isolation and partial characterization of pancreatic polypeptide-like material in the brain of the blowfly Calliphora vomitoria". Biochemical Journal. 197 (3): 767–770. doi:10.1042/bj1970767. ISSN 0264-6021. PMC 1163195. PMID 7325987.
  27. ^ Duve, H.; Johnsen, A. H.; Scott, A. G.; Yu, C. G.; Yagi, K. J.; Tobe, S. S.; Thorpe, A. (1993-03-15). "Callatostatins: neuropeptides from the blowfly Calliphora vomitoria with sequence homology to cockroach allatostatins". Proceedings of the National Academy of Sciences. 90 (6): 2456–2460. Bibcode:1993PNAS...90.2456D. doi:10.1073/pnas.90.6.2456. ISSN 0027-8424. PMC 46106. PMID 8460157.
  28. ^ Walker, G.; Yulf, A. B.; Ratcliffe, J. (1985). "The adhesive organ of the blowfly, Calliphora vomitoria: a functional approach (Diptera: Calliphoridae)". Journal of Zoology. 205 (2): 297–307. doi:10.1111/j.1469-7998.1985.tb03536.x. ISSN 1469-7998.
  29. ^ Walker, G. (1993-01-01). "Adhesion to smooth surfaces by insects — a review". International Journal of Adhesion and Adhesives. 13 (1): 3–7. doi:10.1016/0143-7496(93)90002-Q. ISSN 0143-7496.
  30. ^ Kamal, Adel S. (1958-05-01). "Comparative Study of Thirteen Species of Sarcosaprophagous Calliphoridae and Sarcophagidae (Diptera) I. Bionomics". Annals of the Entomological Society of America. 51 (3): 261–271. doi:10.1093/aesa/51.3.261. ISSN 0013-8746.
  31. ^ Matuszewski, Szymon; Bajerlein, Daria; Konwerski, Szymon; Szpila, Krzysztof (2008-09-18). "An initial study of insect succession and carrion decomposition in various forest habitats of Central Europe". Forensic Science International. 180 (2): 61–69. doi:10.1016/j.forsciint.2008.06.015. ISSN 0379-0738. PMID 18715728.
  32. ^ Benecke, Mark; Lessig, Rüdiger (2001). "Child neglect and forensic entomology". Forensic Science International. 120 (1–2): 155–159. doi:10.1016/S0379-0738(01)00424-8. PMID 11457624.
  33. ^ Bowen, Ivor D.; Mullarkey, Kate; Morgan, S. M. (1996). "Programmed cell death during metamorphosis in the blow-fly Calliphora vomitoria". Microscopy Research and Technique. 34 (3): 202–217. doi:10.1002/(sici)1097-0029(19960615)34:3<202::aid-jemt3>3.0.co;2-r. ISSN 1097-0029. PMID 8743408.
  34. ^ Ames, Carole; Turner, Bryan; Daniel, Barbara (2006-12-20). "The use of mitochondrial cytochrome oxidase I gene (COI) to differentiate two UK blowfly species – Calliphora vicina and Calliphora vomitoria". Forensic Science International. 164 (2): 179–182. doi:10.1016/j.forsciint.2006.01.005. ISSN 0379-0738. PMID 16504435.
  35. ^ Wolf, Jan M. Van Der; Zouwen, Patricia S. Van Der (2010). "Colonization of Cauliflower Blossom (Brassica oleracea) by Xanthomonas campestris pv. campestris, via Flies (Calliphora vomitoria) Can Result in Seed Infestation". Journal of Phytopathology. 158 (11–12): 726–732. doi:10.1111/j.1439-0434.2010.01690.x. ISSN 1439-0434.